Show simple item record

dc.contributor.advisorJosé Alonso Espinosa Araujospa
dc.contributor.authorRIVERA GAMARRA, WALTER ANTONIO
dc.contributor.authorRAMOS GONZALEZ, GUILLERMO ANIBAL
dc.date.accessioned2021-02-01T01:50:26Z
dc.date.available2021-02-01T01:50:26Z
dc.date.issued2021-01-27
dc.identifier.urihttps://repositorio.unicordoba.edu.co/handle/ucordoba/4021
dc.description.abstractEl objetivo fue evaluar la influencia de la variación estacional (temporalidad) en las características seminales de bocachico; para lo cual entre marzo a noviembre/2017, quincenalmente se indujeron de cinco a seis machos, con 4.5 mg de EPC/Kg (aplicación única). En total se indujeron 94 machos de un lote de dos a tres años de edad, mantenidos bajo las mismas condiciones en estanque en tierra. El semen fue obtenido por extrusión de 5 a 6 horas pos-inducción y analizado con la ayuda del software Sperm Class Analyzer (Microptic, SCA, España) y un microscopio de contrate de fase (Nikon, 50i, Japón) estimándose la concentración espermática, tiempo de activación, movilidad total, tipos de movilidad (rápidos, medios, lentos y estáticos) progresividad total y velocidades curvilínea y lineal; además, se midió pH con peachímetro digital (Horiba, Laquatwin, Japón). Para analizar la calidad seminal la temporada fue dividida en cuatro periodos: inicio (mar-abr), media (may-ago), final (sep-oct) y fuera de temporada (nov). Los resultados de la calidad seminal muestran que la mayoría de los parámetros analizados, con excepción del volumen seminal, fueron afectados por la temporalidad, destacándose los mayores valores para las variables de calidad espermática y variables cinéticas movilidad total (90.0±2.2% y 92.4±1.5%); rápidos (57.9±4.1% y 57.9±4.1%); velocidad curvilínea (112.3±5.1 y 102.6±3.5μm/s); velocidad lineal (55.7±3.0 y 61.1±2.1μm/s) al inicio y mitad de la temporada. Luego de transformar las variables F y E se obtuvo un modelo estadístico de tipo exponencial para la fertilidad vs la movilidad total F=exp(0.0402281*Movilidad total y modelos lineales sin intercepto para el resto de variables F=(0.77302*pH semen)2, F=(0.130441*espermatozoides Rápidos)2, F = (0.255909*espermatozoides medio)2, F = (0.0646638*velocidad curvilínea)2, F = (0.119576*velocidad lineal)2 y E=(0.676531* pH semen)2 E = (0.0630927*movilidad total)2, E = (0.115566*espermatozoides rápidos)2, E = (0.223802*espermatozoides medios)2, E = (0.0569335*velocidad curvilínea)2, E = (0.105771*velocidad lineal)2. Con coeficientes de correlación superiores a 0.9. Se puede concluir que el semen del bocachico presenta la mayor calidad al inicio y a la mitad del periodo reproductivo (mar-ago) cuando el pH del semen osciló entre 8.2 y 8.4.spa
dc.description.tableofcontentsLISTA DE FIGURASspa
dc.description.tableofcontentsLISTA DE TABLASspa
dc.description.tableofcontentsRESUMENspa
dc.description.tableofcontentsABSTRACTspa
dc.description.tableofcontents1 INTRODUCCIÓN 13spa
dc.description.tableofcontents2 OBJETIVOS 15spa
dc.description.tableofcontents2.1 OBJETIVO GENERAL 15spa
dc.description.tableofcontents2.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS 15spa
dc.description.tableofcontents3 MARCO TEÓRICO 16spa
dc.description.tableofcontents3.1 BIOECOLOGÍA Y CULTIVO DE BOCACHICO Prochilodus magdalenae 16spa
dc.description.tableofcontents3.1.1 Clasificación taxonómica 16spa
dc.description.tableofcontents3.1.2 Aspectos reproductivos de bocachico 17spa
dc.description.tableofcontents3.2 CALIDAD SEMINAL EN PECES 18spa
dc.description.tableofcontents4 MATERIALES Y MÉTODOS 21spa
dc.description.tableofcontents4.1 TIPO DE ESTUDIO 21spa
dc.description.tableofcontents4.2 LOCALIZACIÓN 21spa
dc.description.tableofcontents4.2.1 Material biológico 21spa
dc.description.tableofcontents4.3 OBTENCIÓN Y ANÁLISIS DEL SEMEN 22spa
dc.description.tableofcontents4.3.1 Evaluación macroscópica 22spa
dc.description.tableofcontents4.3.2 Evaluación microscópica 22spa
dc.description.tableofcontents4.3.2.1 Movilidad total y tipos de movilidad 22spa
dc.description.tableofcontents4.3.2.2 Duración movilidad 23spa
dc.description.tableofcontents4.3.2.3 Concentración espermática 23spa
dc.description.tableofcontents4.3.2.4 Velocidad y progresividad espermática 23spa
dc.description.tableofcontents4.4 pH DEL PLASMA SEMINAL 23spa
dc.description.tableofcontents4.5 FERTILIZACIÓN Y ECLOSIÓN 24spa
dc.description.tableofcontents4.6 CALIDAD EL AGUA 25spa
dc.description.tableofcontents4.7 ANÁLISIS ESTADÍSTICO 25spa
dc.description.tableofcontents5 RESULTADOS 26spa
dc.description.tableofcontents5.1 CARACTERÍSTICAS DE LOS PRODUCTOS SEXUALES 26spa
dc.description.tableofcontents5.2 VARIACIÓN DE LA CALIDAD SEMINAL DEL BOCACHICO DURANTE LA TEMPORADA REPRODUCTIVA EN CAUTIVERIO 27spa
dc.description.tableofcontents5.2.1 Fertilidad, eclosión y calidad seminal en función del pH 28spa
dc.description.tableofcontents5.3 ANÁLISIS DE REGRESIÓN ENTRE CALIDAD SEMINAL Y DESEMPEÑO REPRODUCTIVO DURANTE LA TEMPORADA REPRODUCTIVA DEL BOCACHICO EN CAUTIVERIO 29spa
dc.description.tableofcontents5.3.1 Fertilidad en función de movilidad total, tipos de movilidad y velocidad espermática. 31spa
dc.description.tableofcontents5.3.2 Eclosión en función de movilidad total, tipos de movilidad y velocidad espermática. 32spa
dc.description.tableofcontents5.4 CALIDAD DE AGUA EN LA INCUBACIÓN 33spa
dc.description.tableofcontents6 DISCUSIÓN 34spa
dc.description.tableofcontents7 CONCLUSIONES 39spa
dc.description.tableofcontents8 BIBLIOGRÁFICAS 40spa
dc.description.tableofcontentsLISTA DE FIGURASspa
dc.description.tableofcontentsFigura 1. Ejemplar macho adulto de bocachico. Instituto de Investigación Piscícola de la Universidad de Córdoba (CINPIC, 2017). 17spa
dc.description.tableofcontentsFigura 2 Instituto de Investigaciones Piscícola de la Universidad de Córdoba (CINPIC, 2017) 21spa
dc.description.tableofcontentsFigura 3 Ecuaciones de mejor ajuste y coeficiente de correlación (R2) entre el pH del semen y las variables fertilidad (F) eclosión (E), en la reproducción inducida de Prochilodus magdalenae 30spa
dc.description.tableofcontentsFigura 4. Ecuaciones de mejor ajuste y coeficiente de correlación (R2) entre la movilidad total los diferentes tipos de movilidad espermática y la fertilidad, en la reproducción inducida de Prochilodus magdalenae mantenidos bajo condiciones de cautiverio. Mt, Movilidad total; Ma, Rápidos; Mb, Medios; VCL, Velocidad Curvilínea; VSL, Velocidad lineal. 31spa
dc.description.tableofcontentsFigura 5 Ecuaciones de mejor ajuste y coeficiente de correlación (R2) entre la movilidad total los diferentes tipos de movilidad espermática y la fertilidad, en la reproducción inducida de Prochilodus magdalenae mantenidos bajo condiciones de cautiverio. Mt, Movilidad total; Ma, Rápidos; Mb, Medios; VCL, Velocidad Curvilínea; VSL, Velocidad lineal. 32spa
dc.description.tableofcontentsLISTA DE TABLASspa
dc.description.tableofcontentsTabla 1. Características de los productos sexuales de bocachico, Prochilodus magdalenae obtenidos por inducción hormonal. Datos expresados como media ± error estándar. 26spa
dc.description.tableofcontentsTabla 2. Comportamiento de las variables de calidad espermática y el pH del semen de bocachico durante el periodo (marzo-noviembre) de 2017. Vol sem, Volumen seminal; Mt, Movilidad total; Pt, Progresividad total; VSL, Velocidad lineal; VCL, Velocidad curvilínea. 28spa
dc.description.tableofcontentsTabla 3. Comportamiento de las variables de calidad espermática entre rangos de pH del semen en bocachico. Mt, Movilidad total; Prog, Progresividad; Rap, Rápidos; Med; Medios; Len, Lentos; Est, Estáticos; VSL, Velocidad lineal; VCL, Velocidad curvilínea; C.E, concentración espermática. 29spa
dc.description.tableofcontentsTabla 4. Calidad de agua en incubación de bocachico Prochilodus magdalenae. 33spa
dc.format.mimetypeapplication/pdfspa
dc.language.isospaspa
dc.rightsCopyright Universidad de Córdoba, 2021spa
dc.rights.urihttps://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/spa
dc.titleVariación de la calidad seminal de bocachico prochilodus magdalenae durante una temporada reproductiva en cautiveriospa
dc.typeTrabajo de grado - Pregradospa
dcterms.referencesArias-Gallo M, Jiménez-Segura L, Pardo M. Desarrollo larval de Prochilodus magdalenae Steindachner 1879, pisces Prochilodontidae, rio magdalena Colombia. Rev actual Biol. 2010; 32 (93):199-208.spa
dcterms.referencesAtencio-García VJ. Impactos de la Hidroeléctrica Urrá en los peces migratorios del río Sinú. Rev. Temas agrarios 2000; 8: 25 - 40.spa
dcterms.referencesAtencio-Garcia V, Kerguelén-Durango E, Robert-Petro E. Desempeño reproductivo del bocachico Prochilodus magdalenae inducido dos veces en un mismo año. Rev. MVZ Córdoba 2013; 18(1):3304-3310.spa
dcterms.referencesAtencio-García V, Espinosa-Araujo J, Pérez E, Pardo-Carrasco S. Evaluación de dimetilacetamida como crioprotector para la crioconservación de semen de bocachico Prochilodus magdalenae. Rev MVZ Córdoba. 2013; 45: 151-158.spa
dcterms.referencesAtencio-Garcia V, Espinosa-Araujo J, Martínez J, Pardo-Carrasco S. Insemination of bocachico fish (Prochilodus magdalenae) with fresh or cryopreserved semen: effect of spermatozoa/oocyte ratio. Rev Colomb Cienc Pecu. 2015; (28):347-355.spa
dcterms.referencesBobe J, Labbe C. Egg and sperm qualityin fish. Rev General and Comparative Endocrinology 2010; 165:535–548.spa
dcterms.referencesButts I, Galvano P, Johnson K, Wilson C, Pitcher T. Ovarian fluid influences sperm performance in lake trout. Salvelinus namaycush. Rev. Reproductive biology 2013; 13: 172–175.spa
dcterms.referencesCejko B, Sarosiek B, Krejszeff S, Kowalski R. Multiple collections of common carp Cyprinus carpio L. semen during the reproductive period and its effects on sperm quality. Rev Animal Reproduction Science.2018; (188):178–188. Journal homepage: www.elsevier.com/locate/anireprosci.spa
dcterms.referencesDi Chiacchio I, Almeida I, Leal M, Viveiros A. Sperm quality and its freezing ability throughout the spawning season in B Prochilodus lineatus and Brycon orbignyanus. Rev Theriogenology. 2017; 90: 284- 288.spa
dcterms.referencesEspinosa J. Crioconservación de semen de bagre blanco (Sorubim cuspicaudus). Trabajo de grado, Facultad de Ciencias Básicas. Maestría en Biotecnología, Universidad de Córdoba, Montería, Colombia. 2013.spa
dcterms.referencesGage MJ, Macfarlane CP, Yeates S, Ward RG, Searle JB, Parker GA. Spermatozoal traits and sperm competition in Atlantic salmon: relative sperm velocity is the primary determinant of fertilization success. Curr. Biol. 2004; 14: 44–47.spa
dcterms.referencesGallego V. Sperm Physiology and Quality in Two Marine Teleosts: Anguilla Anguilla & Takifugu niphobles. Universitat Politecnica de Valencia (Ph.D. Thesis. 2013. 162 pp.).spa
dcterms.referencesGarcía–Cruz E, Peña–Osorio K, Gómez–Ramírez E, Hurtado–Giraldo H. Efecto del pH sobre la proporción ovocitaria de Paracheirodon axelrodi, en cautiverio. Rev ORINOQUIA. 2014; 18(2).spa
dcterms.referencesGasparini C, Simmons LW, Beveridge M, Evans JP. Sperm swimming velocity predicts competitive fertilization success in the green swordtail Xiphophorus helleri. PLOS One 2010; 5, e12146.spa
dcterms.referencesHoysak DJ, NR Liley. Fertilization dynamics in sockeye salmon and a comparison of sperm from alternative male phenotypes. J Fish Biol. 2001; 58: 1286-1300.spa
dcterms.referencesKerguelen Durango E, Atencio García V. Caracterización ambiental de la temporada reproductiva de los peces migratorios del rio Sinú (Córdoba, Colombia). Rev MVZ Cordoba.2015; 20(3):4766-4778.spa
dcterms.referencesLahnsteiner F, Weisman T, Patzner, R. Composition of the ovarian fluid in 4 salmonid species: Onchorhynchus mykiss, Salmo trutta f lacustrus, Salvelinus lacustris and Hucho hucho. Rev Reprod Nutr Dev. 1995; 35: 465–474.spa
dcterms.referencesLiu Q, Li, J, Xiao Z, Ding F, Yu D, Xu X. Use of computer-assisted sperm Analysis (CASA) to evaluate the quality of cryopreserved sperm in red Seabream (Pagrus major). Aquaculture. 2007; 263: 20–25.spa
dcterms.referencesLubzens E, Young G, Bobe J, Cerdà J. Oogenesis in teleost: How fish eggs are formed. Rev. General and Comparative Endocrinology. 2010; 165(3): 367-489.spa
dcterms.referencesMira T, Medina-Roble, Cruz-Casallas P. Evaluación de tres protocolos hormonales para la inducción de la espermiación en yaque Leiarius marmoratus. Rev. MVZ Córdoba. 2010; 15(2):2070-2077spa
dcterms.referencesMiura T, Yamauchi K, Takahashi H, Nagahama Y. The role of hormones in the acquisition of sperm motility in salmonid fish. J. Exp. Zool. 1992; 261: 359–363.spa
dcterms.referencesMojica J, Castellanos C, Usma S, Álvarez R. Libro rojo de peces dulceacuícolas de Colombia. La serie Libros Rojos de Especies Amenazadas de Colombia. Instituto de Ciencias Naturales, Universidad Nacional de Colombia, Ministerio del Medio Ambiente. Bogotá, Colombia; 2012.spa
dcterms.referencesMorisawa S, Morisawa M. Induction of potential for sperm motility by bicarbonate and pH in rainbow trout and chum salmon. J. Exp. Biol. 1988; 136: 13–22.spa
dcterms.referencesMorisawa S, Ishida K, Okuno M, Morisawa M. Roles of pH and cyclic adenosine monophosphate in the acquisition of potential for sperm motility during migration from the sea to the river in chum salmon. Mol. Reprod. 1993. 34: 420–426.spa
dcterms.referencesMüller T, Horvath L, Szábo T, Ittzés I, Bognár A, Faidt P, Ittzés A, Urbányi B, Kcska B. Novel method for induced propagation of fhis: sperm injection in oviducts and ovary / ovarian lavage with sperm. Rev Aquaculture. 2018; 482: 124-129.spa
dcterms.referencesMylonas C, Fostier A, Zanuy S. Broodstock management and hormonal manipulation of fish reproduction. Rev Gen Comp Endocrinol.2010; 165: 516-534.spa
dcterms.referencesObando-Bulla MJ, Gómez-Ramírez E, Tovar-Bohórquez MO, Rincón L, Caldas-Martínez Ml, Hurt ado-Gir a ldo H. E studio morfométrico y topológico del cerebro del pez Neón Cardenal, Paracheirodon axelrodi (Characiformes: Characidae). Rev Acta Biol. 2013; 35(98): 45-61.spa
dcterms.referencesOlaya-Nieto C, Solano D, Florez O, Blanco H, Segura F. Evaluación preliminar de la fecundidad del bocachico (Prochilodus magdalenae) en el rio Sinú, Colombia. Rev MVZ Córdoba. 2001; (6) 1:31-34.spa
dcterms.referencesOttesen O, Babiak I, Dahle G. Sperm competition and fertilization success of Atlantic halibut (Hippoglossus hippoglossus L.). Aquaculture. 2009; 286: 240–245.spa
dcterms.referencesPineda-Santis H, Gómez-Oquendo J, Montoya-Páez J, Toro-Rendón V, Acevedo-Villa O, Restrepo-Betancur G. Crioconservación de semen y calidad espermática en sabaleta Brycon henni (Pisces: Characidae). Rev ORINOQUIA. 2015;19(2): 166-173. http://www.scielo.org.co/pdf/rori/v19n2/v19n2a03.pdfspa
dcterms.referencesRamirez-Merlano J, Medina-Robles V, Cruz-Casallas P. Variación estacional de las características seminales del bagre rayado Pseudoplatystoma metaense (Telostei, pimelodidae). Rev. MVZ CÓRDOBA. 2011; 16(1): 2336-2348.spa
dcterms.referencesRoca-Lanao, B., R. Mendoza-Ureche. y L. Manjarrés-Martínez. Producción de la acuicultura en el área monitoreada por el SEPEC durante el período agosto- 44 diciembre de 2018. Autoridad Nacional de Acuicultura y Pesca (AUNAP), Bogotá, 2018. 24 p.spa
dcterms.referencesRudolfsen G, Figenschou L, Folstad I, Kleven O. Sperm velocity influences paternity in the Atlantic cod (Gadus morhua L.) Rev Aquac. 2008; 39, 212–216.spa
dcterms.referencesRurangwa E, Kime DE, Ollevier F, Nash JP. The measurement of sperm motility and factors affecting sperm quality in cultured fish. Rev Aquaculture 2004; 234: 1-28.spa
dcterms.referencesSarosiek B, Dryl K, Krejszef S, Żarski D. Characterization of pikeperch (Sander lucioperca) milt collected with a syringe and a catheteror. Rev Aquaculture. 2016; 450: 14–16.spa
dcterms.referencesScott A, Baynes S. A review of the biology handling and storage of salmonid spermatozoa. Rev J Fish Biol 1980,17: 707-739.spa
dcterms.referencesSEPEC. Autoridad Nacional de Acuicultura y Pesca (AUNAP)-Universidad del Magdalena. Boletín estadístico. (2016).spa
dcterms.referencesSloman K. The diversity of fish reproduction. En: Farrell A. Encyclopedia of fish physiology: from genome to environment. San Diego US; 2011. p 613 – 615.spa
dcterms.referencesUrbach D, Folstad I, Rudolfsen G. Effects of ovarian fluid on sperm velocity in Arctic charr (Salvelinus alpinus). Rev Behavioural Ecology & Sociobiology. 2005; 57: 438–442.spa
dcterms.referencesValderrama M, J-Segura S, López-Casas T, Rivas C, Rincón S, Nieto-Torres G. Prochilodus magdalenae (Characiformes, Prochilodontidae). Capítulo 7. Pp. 305-311. En: Lasso CA, Agudelo Córdoba LF, Jiménez- Segura H, Ramírez-Gil M, Morales- Betancourt RE, Ajiaco-Martínez F, de P Gutiérrez JS, Usma Oviedo SE, Muñoz Torres A, I Sanabria Ochoa (Eds.) I. Catálogo de los Recursos Pesqueros 45 Continentales de Colombia. Serie Editorial Recursos Hidrobiológicos y Pesqueros continentales de Colombia. Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH). Bogotá; D. C., Colombia 2011.). Capítulo 7.p. 305-311.spa
dc.type.driverinfo:eu-repo/semantics/bachelorThesisspa
dc.rights.accessrightsinfo:eu-repo/semantics/openAccessspa
dc.rights.creativecommonsAtribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0 Internacional (CC BY-NC-ND 4.0)spa
dc.subject.proposalActivaciónspa
dc.subject.proposalespermatozoidesspa
dc.subject.proposalmovilidad totalspa
dc.subject.proposalprogresividadspa
dc.subject.proposalreproducciónspa
dc.subject.proposalSCAspa
dc.type.coarhttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1fspa
dc.type.versioninfo:eu-repo/semantics/submittedVersionspa
dc.subject.keywordsactivationspa
dc.subject.keywordsspermspa
dc.subject.keywordstotal mobilityspa
dc.subject.keywordsprogressivityspa
dc.subject.keywordsreproductionspa
dc.subject.keywordsSCAspa
dc.description.degreelevelPregradospa
dc.description.degreenameProfesional en Acuiculturaspa
dc.publisher.facultyFacultad de Medicina Veterinaria y Zootecniaspa
dc.publisher.placeMontería, Córdoba, Colombiaspa
dc.publisher.programAcuiculturaspa
dc.type.contentTextspa
dc.type.redcolhttps://purl.org/redcol/resource_type/TPspa
oaire.accessrightshttp://purl.org/coar/access_right/c_abf2spa
oaire.versionhttp://purl.org/coar/version/c_ab4af688f83e57aaspa
dc.description.modalityTrabajos de Investigación y/o Extensiónspa


Files in this item

Thumbnail
Thumbnail

This item appears in the following Collection(s)

Show simple item record

Copyright Universidad de Córdoba, 2021
Except where otherwise noted, this item's license is described as Copyright Universidad de Córdoba, 2021