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Evaluación de bacterias simbióticas nativas con potencial biofertilizante en pasto climacuna (Dichanthium annulatum-Forssk-Stapf) bajo condiciones semicontroladas en Montería -Colombia

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dc.contributor.advisorCabrales Herrera, Eliécer Miguel
dc.contributor.authorCarvajal Sierra, María del Carmen
dc.date.accessioned2022-01-23T22:11:49Z
dc.date.available2022-01-23T22:11:49Z
dc.date.issued2021-12-20
dc.description.abstractLa aplicación de bacterias simbióticas promotoras de crecimiento vegetal, se considera una práctica biotecnológica que contribuye a optimizar los sistemas de producción agrícola y se presenta como una opción para la reducción del uso de fertilizantes sintéticos. En este estudio se caracterizaron y se evaluaron bacterias simbióticas nativas con potencial biofertilizante, aisladas de suelos rizosferico de rastrojo y potrero en el municipio de Tierralta Alto Sinú-Departamento de Córdoba. Para ello se colectaron muestras de suelo con raíces en los primeros 15 cm de profundidad, en un recorrido en zig-zag, las muestras se mezclaron y se homogenizaron, de esta se tomó aproximadamente 1kg de muestra de cada zona.Se realizaron aislamientos en medio Burk‟s de microorganismos con características morfológicas que coincidían para diazótrofas simbióticas. A los aislados de interés, se les midió la capacidad fijadora de N utilizando la técnica colorimétrica de Berthelot (Lara et al., 2007), para la evaluación de la solubilización de fosfatos se empleó el método vanadomolibdofosfórico (Sancho et al., 2004) y para la producción de ácido indol acético (AIA) el método colorimétrico utilizando el reactivo Salkowski (Sarmiento, 2006). Los resultados de estas pruebas bioquímicas arrojaron que el aislado R7 mostró actividad positiva para la promoción de crecimiento vegetal, con concentraciones de: 2,876 mg/L para el ión amonio, 1472,849 mg/L en la solubilización de fosfatos y 5,919 mg/L en la producción de la auxina. De acuerdo a la identificación molecular, la cepa R7 pertenece al género Rhizobium.spa
dc.description.abstractThe application of symbiotic plant growth promoting bacteria is considered a biotechnological practice that contributes to optimize agricultural production systems and is presented as an option to reduce the use of synthetic fertilizers. In this study, native symbiotic bacteria with biofertilizer potential, isolated from rhizosphere stubble and pasture soils in the municipality of Tierralta Alto SinúDepartment of Córdoba, were characterized and evaluated. Soil samples were collected with roots in the first 15 cm of depth, in a zig-zag path, the samples were mixed and homogenized, approximately 1 kg of sample was taken from each zone, isolations were made in Burk's medium of microorganisms with morphological characteristics that coincided for symbiotic diazotrophs. The N-fixing capacity of the isolates of interest was measured using the Berthelot colorimetric technique (Lara et al., 2007), for the evaluation of phosphate solubilization the vanadomolybdophosphoric method was used (Sancho et al., 2004) and for the production of indole acetic acid (IAA) the colorimetric method was used using the Salkowski reagent (Sarmiento, 2006). The results of these biochemical tests showed that isolate R7 showed positive activity for plant growth promotion, with concentrations of 2,876 mg/L for ammonium ion, 1472,849 mg/L for phosphate solubilization and 5,919 mg/L for auxin production. According to molecular identification, strain R7 belongs to the genus Rhizobium. eng
dc.description.degreelevelMaestríaspa
dc.description.degreenameMagíster en Biotecnologíaspa
dc.description.modalityTrabajos de Investigación y/o Extensiónspa
dc.description.tableofcontentsRESUMEN .............................................................................................................. XIVspa
dc.description.tableofcontentsABSTRACT ................................................................................................................ XVspa
dc.description.tableofcontentsINTRODUCCIÓN ........................................................................................................ 16spa
dc.description.tableofcontents2. OBJETIVOS ..................................................................................................... 19spa
dc.description.tableofcontents2.1. OBJETIVO GENERAL ...................................................................................... 19spa
dc.description.tableofcontents2.2. OBJETIVOS ESPECÍFICOS ............................................................................. 19spa
dc.description.tableofcontents3. MARCO TEÓRICO ........................................................................................... 20spa
dc.description.tableofcontents3.1. LA FERTILIZACIÓN BIOLÓGICA EN LA AGRICULTURA ............................... 20spa
dc.description.tableofcontents3.2. BIOFERTILIZANTES (BF) ................................................................................ 21spa
dc.description.tableofcontents3.3. BACTERIAS SIMBIÓTICAS PROMOTORAS DEL CRECIMIENTO VEGETAL 21spa
dc.description.tableofcontents3.3.1. Características del género Rhizobium ........................................................... 22spa
dc.description.tableofcontents3.3.2. Características del género Bradyrhizobium ................................................... 23spa
dc.description.tableofcontents3.3.3. Características del género Azorhizobium ...................................................... 23spa
dc.description.tableofcontents3.4. NITRÓGENO Y FIJACIÓN BIOLÓGICA DE NITRÓGENO (FBN) .................... 24spa
dc.description.tableofcontents3.5. FÓSFORO Y SOLUBILIZACIÓN DE FOSFATOS ............................................ 25spa
dc.description.tableofcontents3.6. ÁCIDO INDOL-3-ACÉTICO (AIA) ..................................................................... 26spa
dc.description.tableofcontents3.7. PASTO CLIMACUNA (Dichanthium annulatum-Forssk-Stapf) ......................... 26spa
dc.description.tableofcontents3.8. ANTECEDENTES ............................................................................................. 27spa
dc.description.tableofcontents4. METODOLOGÍA ............................................................................................... 30spa
dc.description.tableofcontents4.1. LOCALIZACIÓN ............................................................................................... 30spa
dc.description.tableofcontents4.2. FASE DE CAMPO ............................................................................................ 31spa
dc.description.tableofcontents4.3. SELECCIÓN DE BACTERIAS CON POTENCIAL BIOFERTILIZANTE ............ 31spa
dc.description.tableofcontents4.3.1. Aislamiento primario ...................................................................................... 31spa
dc.description.tableofcontents4.3.2. Aislamiento secundario ................................................................................. 32spa
dc.description.tableofcontents4.3.3. Determinación de la actividad fijadora de nitrógeno ...................................... 32spa
dc.description.tableofcontents4.3.4. Prueba de solubilización de fosfato ............................................................... 33spa
dc.description.tableofcontents4.3.5. Cuantificación de la producción de ácido indol acético (AIA) ........................ 34spa
dc.description.tableofcontents4.4. CARACTERIZACIÓN DE BACTERIAS CON POTENCIAL BIOFERTILIZANTE 35spa
dc.description.tableofcontents4.4.1. Extracción y amplificación de ADN de bacteria ............................................. 35spa
dc.description.tableofcontents4.4.2. Purificación y secuenciación de los productos PCR ...................................... 36spa
dc.description.tableofcontents4.4.3. Alineación de secuencias y análisis de datos ................................................ 36spa
dc.description.tableofcontents4.5. EVALUACIÓN DEL BIOINOCULANTE EN PASTO CLIMACUNA .................... 36spa
dc.description.tableofcontents4.5.1. Preparación y conservación del bioinoculante .............................................. 36spa
dc.description.tableofcontents4.5.2. Montaje del ensayo en condiciones semicontroladas .................................... 37spa
dc.description.tableofcontents4.5.3. Evaluación de parámetros biométricos .......................................................... 38spa
dc.description.tableofcontents4.5.4. Análisis estadístico ........................................................................................ 40spa
dc.description.tableofcontents5. RESULTADOS Y DISCUSIÓN ......................................................................... 41spa
dc.description.tableofcontents5.1. SELECCIÓN DE BACTERIAS CON POTENCIAL BIOFERTILIZANTE ............ 41spa
dc.description.tableofcontents5.1.1. Capacidad fijadora de nitrógeno .................................................................... 43spa
dc.description.tableofcontents5.1.2. Evaluación de la capacidad solubilizadora de fosfato ................................... 44spa
dc.description.tableofcontents5.1.3. Evaluación de la producción de auxina: Ácido Indol Acético (AIA) ................ 46spa
dc.description.tableofcontents5.2. CARACTERIZACIÓN DE BACTERIAS CON POTENCIAL BIOFERTILIZANTE 48spa
dc.description.tableofcontents5.2.1. Identificación molecular de las bacterias seleccionadas................................ 48spa
dc.description.tableofcontents5.3. EVALUACIÓN DEL POTENCIAL BIOFERTILIZANTE DE UNA CEPA DEL GÉNERO Rhizobium sp. EN PASTO CLIMACUNA (Dichanthium annulatum-Forssk-Stapf) 50spa
dc.description.tableofcontents6. CONCLUSIÓN .................................................................................................. 68spa
dc.description.tableofcontents7. RECOMENDACIONES ..................................................................................... 69spa
dc.description.tableofcontentsREFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS ............................................................................ 70spa
dc.description.tableofcontentsANEXOS ..................................................................................................................... 79spa
dc.format.mimetypeapplication/pdfspa
dc.identifier.urihttps://repositorio.unicordoba.edu.co/handle/ucordoba/4761
dc.language.isospaspa
dc.publisherUniversidad de Córdobaspa
dc.publisher.facultyFacultad de Ciencias Básicasspa
dc.publisher.placeMontería, Córdoba, Colombiaspa
dc.publisher.programMaestría en Biotecnologíaspa
dc.rightsCopyright Universidad de Córdoba, 2021spa
dc.rights.accessrightsinfo:eu-repo/semantics/openAccessspa
dc.rights.creativecommonsAtribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0 Internacional (CC BY-NC-ND 4.0)spa
dc.rights.urihttps://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/spa
dc.subject.keywordsRhizobium speng
dc.subject.keywordsN fixationeng
dc.subject.keywordsPhostate solubilizationeng
dc.subject.keywordsIAAeng
dc.subject.keywordsClimacuna grasseng
dc.subject.proposalRhizobium spspa
dc.subject.proposalFijación de Nspa
dc.subject.proposalSolubilización de fostatosspa
dc.subject.proposalAIAspa
dc.subject.proposalPasto climacunaspa
dc.titleEvaluación de bacterias simbióticas nativas con potencial biofertilizante en pasto climacuna (Dichanthium annulatum-Forssk-Stapf) bajo condiciones semicontroladas en Montería -Colombiaspa
dc.typeTrabajo de grado - Maestríaspa
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