Publicación:
Efecto del nitrato en el crecimiento y producción de astaxantina en la microalga Haematococcus pluvialis (Chlorophyta: Chlamydomonadales) cultivada en condiciones de laboratorio

dc.contributor.advisorMogollón Arismendy, Marthaspa
dc.contributor.advisorArango Rivas, Carolinaspa
dc.contributor.authorMontiel Oviedo, Jeraldynspa
dc.date.accessioned2020-06-11T21:33:03Zspa
dc.date.available2020-06-11T21:33:03Zspa
dc.date.issued2020-12-30spa
dc.description.abstractThe effect of NaNO3 on the growth and production of astaxanthin was evaluated in the Haematococcus pluvialis microalgae, cultivated under laboratory conditions. The species was inoculated in modified Bold culture medium, establishing different concentrations as tests: 0.45, 0.60 and 1.0 g / L of NaNO3 in the culture medium, in triplicate, and a control (unmodified medium). All cultures were maintained at a constant temperature of 25 ± 1 ° C, daily shaking and photoperiod (12:12). Cell counts were performed every 48 hours, until the stationary phase was reached; then, the variables of cell density, growth rate and doubling time were estimated; in addition, the content of astaxanthin in H. pluvialis produced under stress conditions in the culture medium was determined and the growth and production of astaxanthin was compared in each of the treatments. The results showed that the concentration of NaNO3 in the culture medium did not significantly inhibit the population growth of H. pluvialis, except during the 48 hours and 240 hours. Growth kinetic parameters indicated slight delays in the specific growth rate and doubling time, showing differences in both variables at 48 hours and at the end of the test. On the other hand, the unmodified Bold Medium (0.85 g / L) presented the highest concentration of astaxanthin compared to the other treatments with a value of (3,335 mg.g1 ), when comparing the density and production of astaxanthin among the treatments, it was obtained that the control treatment presented a good performance in both variables showing a cell density of (222x104 cell / mL) and the highest content of astaxanthin (3,335 mg.g1 ).eng
dc.description.degreelevelPregradospa
dc.description.degreenameBiólogo(a)spa
dc.description.resumenSe evaluó el efecto del NaNO3 en el crecimiento y producción de astaxantina en la microalga Haematococcus pluvialis, cultivada en condiciones de laboratorio. La especie fue inoculada en medio de cultivo Bold modificado, estableciendo como tratamientos diferentes concentraciones: 0.45, 0.60 y 1.0 g/L de NaNO3 en el medio de cultivo, por triplicado, y un control (medio sin modificar). Todos los cultivos se mantuvieron a una temperatura constante de 25 ±1°C, agitación diaria y fotoperiodo (12:12). Se realizaron conteos celulares cada 48 horas, hasta alcanzar la fase estacionaria; luego, fueron estimadas las variables de densidad celular, tasa de crecimiento y tiempo de duplicación; además, se determinó el contenido de astaxantina en H. pluvialis producida bajo condiciones de estrés en el medio de cultivo y se comparó el crecimiento y producción de astaxantina en cada uno de los tratamientos. Los resultados mostraron que la concentración de NaNO3 en el medio de cultivo no inhibieron significativamente el crecimiento poblacional de H. pluvialis, excepto durante las 48 horas y 240 horas. Los parámetros cinéticos de crecimiento, señalaron leves retrasos en la velocidad especifica de crecimiento y el tiempo de duplicación, presentando diferencias de ambas variables a las 48 horas y al finalizar el ensayo. Por otro lado, el Medio Bold sin modificar (0.85 g/L) presentó la mayor concentración de astaxantina con respecto a los demás tratamientos con un valor de (3,335 mg.g1 ), al comparar la densidad y producción de astaxantina entre los tratamientos, se obtuvo que el tratamiento control presentó un buen rendimiento en ambas variables mostrando una densidad celular de 222x104 cel/mL y el mayor contenido de astaxantina (3,335 mg.g1 ).spa
dc.description.tableofcontentsRESUMEN .................................................................................................................................................... 14spa
dc.description.tableofcontentsABSTRATC .................................................................................................................................................... 15spa
dc.description.tableofcontentsINTRODUCCIÓN ........................................................................................................................................... 16spa
dc.description.tableofcontentsOBJETIVOS ........................................................................................................................................... 19spa
dc.description.tableofcontents2.1. Objetivo general ............................................................................................................................... 19spa
dc.description.tableofcontents2.2. Objetivos específicos ....................................................................................................................... 19spa
dc.description.tableofcontents3. MARCO REFERENCIAL ...................................................................................................................... 20spa
dc.description.tableofcontents3.1. Generalidades de las microalgas ...................................................................................................... 20spa
dc.description.tableofcontents3.2. Nutrientes requeridos por las microalgas ......................................................................................... 21spa
dc.description.tableofcontents3.3. Factores determinantes en el cultivo de microalgas ......................................................................... 21spa
dc.description.tableofcontents3.3.1. pH .................................................................................................................................................. 22spa
dc.description.tableofcontents3.3.2. Fotoperiodo: .................................................................................................................................. 22spa
dc.description.tableofcontents3.4. Crecimiento de las microalgas: ........................................................................................................ 23spa
dc.description.tableofcontents3.5. Haematococcus pluvialis ................................................................................................................. 24spa
dc.description.tableofcontents3.5.1 Descripción de la especie ........................................................................................................... 25spa
dc.description.tableofcontents3.5.2. Ciclo de vida de H. pluvialis ..................................................................................................... 26spa
dc.description.tableofcontents3.6. Astaxantina ...................................................................................................................................... 28spa
dc.description.tableofcontents3.2. Antecedentes .................................................................................................................................... 29spa
dc.description.tableofcontents4. METODOLOGÍA ................................................................................................................................... 33spa
dc.description.tableofcontents4.1. Localización ..................................................................................................................................... 33spa
dc.description.tableofcontents4.2. Preparación de medios de cultivos ................................................................................................... 34spa
dc.description.tableofcontents4.2.1. Solución stock de Nitrato .......................................................................................................... 34spa
dc.description.tableofcontents4.3. Condiciones de cultivo ..................................................................................................................... 35spa
dc.description.tableofcontents4.4. Crecimiento poblacional de Haematococcus pluvialis .................................................................... 37spa
dc.description.tableofcontents4.5. Obtención de biomasa ...................................................................................................................... 38spa
dc.description.tableofcontents4.6. Determinación de astaxantina .......................................................................................................... 39spa
dc.description.tableofcontents4.6.1. Método de extracción de astaxantina ........................................................................................ 39spa
dc.description.tableofcontents4.6.2. Cuantificación de astaxantina por espectrofotometría ultravioleta visible ............................... 40spa
dc.description.tableofcontents5. RESULTADOS....................................................................................................................................... 42spa
dc.description.tableofcontents5.1. Parámetros de crecimiento ............................................................................................................... 42spa
dc.description.tableofcontents5.1.1. Densidad poblacional ................................................................................................................ 42spa
dc.description.tableofcontents5.1.2. Tasa de crecimiento y tiempo de duplicación ........................................................................... 44spa
dc.description.tableofcontents5.1.3. Biomasa obtenida ...................................................................................................................... 46spa
dc.description.tableofcontents5.2. Contenido de astaxantina ................................................................................................................. 48spa
dc.description.tableofcontents5.3. Relación de la densidad celular y concentración de astaxantina ...................................................... 49spa
dc.description.tableofcontents6. DISCUSIÓN ........................................................................................................................................... 51spa
dc.description.tableofcontents6.1. Parámetros de crecimiento. .............................................................................................................. 51spa
dc.description.tableofcontents6.2. Concentración de Astaxantina ......................................................................................................... 53spa
dc.description.tableofcontents6.3. Crecimiento y producción de astaxantina de H. pluvialis ................................................................ 54spa
dc.description.tableofcontents7. CONCLUSIONES .................................................................................................................................. 57spa
dc.description.tableofcontentsRECOMENDACIONES ............................................................................................................................. 58spa
dc.description.tableofcontentsBIBLIOGRAFÍA ........................................................................................................................................ 59spa
dc.description.tableofcontentsANEXOS.……………………………………………………………………………………………………………………………………………71spa
dc.format.mimetypeapplication/pdfspa
dc.identifier.urihttps://repositorio.unicordoba.edu.co/handle/ucordoba/2893spa
dc.language.isospaspa
dc.publisher.facultyFacultad de Ciencias Básicasspa
dc.publisher.programBiologíaspa
dc.relation.referencesAbalde J, Orosa G, Torres, Cid E. (2003). Biotecnología y aplicaciones de microorganismos pigmentados: IV Simposio científico en biología celular y molecular. 95-117. ISBN: 84-95322-04-8spa
dc.relation.referencesAbdel-raouf, Al-homaidan y Ibm Ibraheem. (2012). Microalgae and wastewater treatment. Saudi journal of biological sciences 19: 257-275.spa
dc.relation.referencesAhmed F, Li Y, Fanning K, Netzel M, Schenk PM. (2015) Effect of drying, storage temperature and air exposure on astaxanthin stability from Haematococcus pluvialis. Food Res Int 74:231–236.spa
dc.relation.referencesAikawa S, Izumi Y, Matsuda F, Hasunuma T, Chang J, Kondo A. (2012). Synergistic enhancement of glycogen production in Arthrospira platensis by optimization of light intensity and nitrate supply. Bioresource Technology.108 (1): 211-215.spa
dc.relation.referencesAlgatechnologies Ltd. (2015). Alga technologies. Recuperado del sitio web: http://www.algatech.com/products-item.asp?cat=001_.spa
dc.relation.referencesAllewaert C, Vanormelingen P, Pröschold T, Gómez P, González M, Bilcke G, D’Hont S, Vyverman W. (2015). Species diversity in European Haematococcus pluvialis (Chlorophyceae, Volvocales). Phycologia, 54 (6): 583-598 pspa
dc.relation.referencesAravena, R. (2011). Extracción de astaxantina de Haematococcus pluvialis usando CO2 supercrítico. Santiago de Chile, Chile: Pontificia Universidad Católica de Chile.spa
dc.relation.referencesArredondo y V.Henríquez, Over. (2007). Accumulation of Astaxanthin in Haematococcus Pluvialis Through Chloroplast Genetic Engineering. Algal Research, 31, 291–297.spa
dc.relation.referencesBai J. N, Nair B. B, Shashirekha V. (2016). Nomenclature, taxonomy, reproduction and life cycle of the genus Haematococcus, Haematococcaceae, Chlorophycea. Phycological society, 46 (1): 64-70.spa
dc.relation.referencesBlanco J. (1991). El Fitoplancton: su cultivo. Xunta de Galicia. 31 pp.spa
dc.relation.referencesBoussiba, Bing W, Jian-Ping, Y, Zarka y Chen, F. (1999). Changes in pigments profile in the green alga Haematococcus pluvialis exposed to environmental stresses.spa
dc.relation.referencesBrennan L, Owende P. (2010). Biofuels from microalgae- a review of technologies for production, processing, and extractions of biofuels and co-products.spa
dc.relation.referencesButler, T, McDougall, G, Campbell, R., Stanley, M. y Day, J. (2018). Cribado de medios para la obtención de macrozooides móviles rojos de Haematococcus pluvialis ricos en astaxantina y ácidos grasos. Biología, 7 (1), 2.spa
dc.relation.referencesCardol, P., Forti, G. y Finazzi, G. (2011). Regulation of electron transport in microalgae. Biochimica et Biophysica Acta, 1807, 912-918.spa
dc.relation.referencesChoi, Y.-E, Yun, Y.-S, Park, J.M, Yang, J.-W. (2011). Determination of the time transferring cells for astaxanthin production considering two-stage process of Haematococcus pluvialis cultivation. Bioresour. Technol. 102, 11249–11253.spa
dc.relation.referencesCollins A.M, Howland D.T.J, Han D, Hu Q, Beechem T. E, Timlin J. A. (2011). Carotenoid Distribution in Living Cells of Haematococcus pluvialis (Chlorophyceae). PLoS ONE, 9:6spa
dc.relation.referencesConverti, Casazza, A, Ortiz, E, Perego, P. y Del Borghi, M. (2009). Effect of temperature and nitrogen concentration on the growth and lipid content of Nannochloropsis oculata and Chlorella vulgaris for biodiesel production. Chemical Engineering and Processing 48: 1146– 115.spa
dc.relation.referencesCórdoba N.A, Acero N.R, Duque L.B, Jimenez J.A, Serna J.A.J. (2014). Obtención y caracterización de astaxantina de la microalga Haematococcus pluvialis. UGCiencia. 21.spa
dc.relation.referencesCysewski G. R, Todd R. (2004). Industrial Production of Microalgal Cell‐Mass and Secondary Products ‐ Species of High Potential: Haematococcus. Handbook of Microalgal Culture: Biotechnology and Applied Phycology. Ed. Amos Richmond. 14-15.spa
dc.relation.referencesDe Morais, M. y Costa J. (2007). Biofixation of carbon dioxide by Spirulina sp. and Scenedesmus obliquus cultivated in a three-stage serial tubular photobioreactor. Journal of Biotechnology 129: 439–445spa
dc.relation.referencesDominguez, A (2011). Comparación de la producción de pigmentos carotenoides por Haematococcus pluvialis y Phaffia rhodozyma. México D.F, México: Universidad Autónoma Metropolitana.spa
dc.relation.referencesDomínguez, Fábregas, J, y Otero, A. (2006). Astaxantina, el oro rojo de la microalga Haematoccocus pluvialis. Boletín de la Sociedad Española de Ficología, 35: 4-9.spa
dc.relation.referencesDragos, N, Bercea, V, Bica, A, Druga, B, Nicoara, A Y Coman, C. (2010) Astaxanthin production from a new strain of Haematococcus pluvialis Grown in batch culture. Annals of the Romanian Society for Cell Biology 15(2).353-361.spa
dc.relation.referencesFan L, Vonshak, A, Boussiba, S. (1994). Effect of the temperature and irradiance on growth of Haematococcus pluvialis (Chlorophyceae).spa
dc.relation.referencesGao, Z, Meng C, Gao H, Li Y, Zhang X, Xu D, Zhou S, Liu B, Su Y, Ye N. (2013). Carotenoid genes transcriptional regulation for astaxanthin accumulation in fresh water unicellular alga Haematococcus pluvialis by gibberellin A3 (GA3).spa
dc.relation.referencesGarcía Cubero, R. (2014). Producción de biomasa de microalgas rica en hidratos de carbono acoplada a la eliminación fotosintética de CO2.spa
dc.relation.referencesGiannelli L, H Yamada, T Katsuda y H. Yamaji, (2015). Effects of Temperature on the Astaxanthin Productivity and Light Harvesting Characteristics of the Green Alga Haematococcus Pluvialis, Journal of Bioscience and Bioengineering, 119(3), 345-350.spa
dc.relation.referencesGonzález M, Cifuentes AS, Gómez PI. (2009). Growth and total Carotenoid Content in Four Chilean Strains of Haematococcus pluvialis Flotow, Under Laboratory Conditions. Gayana Botánica.spa
dc.relation.referencesGrobbelaar Ju. (2004). Algal Nutrition: Mineral Nutrition. in: Richmond a (ed). handbook of microalgal culture: biotechnology and applied phycology, pp. 97-115.spa
dc.relation.referencesHanan N, Al- Shorgani N, Shukor H, Rahman N, Kalil M. (2013). Pre- optimization conditions for Haematococcus pluvialis growth.spa
dc.relation.referencesHarker, M, Tsavalos, A J, y Young A. (1996). Factors responsible for astaxanthin formation in the Chlorophyte Haematococcus pluvialis. Bioresource Technology, 55(3): 207-214.spa
dc.relation.referencesHernández, K.J, M.E. Perez. (2015). Haematococcus Pluvialis, Revisión Bibliográfica 2003-2013, Rev. Mex. Cien. Farm., 46(1), 7-16.spa
dc.relation.referencesHernández-Pérez A. y Labbé J. I. (2015). Microalgas, cultivo y beneficios. Revista de Biología Marina y Oceanografía. 49: 157-173.spa
dc.relation.referencesHerrera M, Sánchez D, López J, Nuñez J y Moreno O. (2011). Extracción de la astaxantina y su estabilidad. Revista Latinoamericana de Recursos Naturales 7 (1), 21-27.spa
dc.relation.referencesHifney A, Issa A, Fawzy . (2013). Abiotic stress induced production of beta carotene, allophycocyanin and total lipids in Spirulina sp. Journal of Biology and Earth Sciences. 3 (1): 54-64.spa
dc.relation.referencesHill, W.R, Rinchard, J. y Czesny, S. (2011). Light, nutrients and the fatty acid composition of stream Periphyton. Freshwater Biology, 56, 1825-1836.spa
dc.relation.referencesHo. (2014) Enhancing lutein productivity of an indigenous microalga Scenedesmus obliquus FSP-3 using light-related strategiesspa
dc.relation.referencesHoff F.H. y T.W. Snell. 1987. Plankton culture manual. Fifth edition. Florida Aquafarms, Inc. 162 pp.spa
dc.relation.referencesHong M-E, Choi SP, Park. (2012). Astaxanthin production by a highly photosensitive Haematococcus mutant. Process Biochem.; 47(12):1972-1979.spa
dc.relation.referencesImamoglu E, Dalay MC, Sukan FV. (2009). Influences of different stress media and high light intensities on accumulation of astaxanthin in the green alga Haematococcus pluvialis. New biotechnology, 26 (3/4): 199-204.spa
dc.relation.referencesJ. Wang, D. Han, MR Sommerfeld, C. Lu, Q. Hu. (2013). Efecto de la densidad de biomasa inicial sobre el crecimiento y la producción de astaxantina de Haematococcus pluvialis en un fotobiorreactor exterior. J Appl Phycol 25, 253–260spa
dc.relation.referencesKobayashi, M, Kakizono, T, Nagai, S, (1993). Enhanced carotenoid biosynthesis by oxidative stress in acetate-induced cyst cells of a green unicellular alga Haematococcus pluvialis. Appl. Environ. Microb. 59 (3), 867–873.spa
dc.relation.referencesLi J, Zhu D, Niu Shen y Wang G (2015). An economic assessment of astaxanthin production by large scale cultivation of Haematococcus pluvialis. Biotechnology Advances, 29 (6), 568-574.spa
dc.relation.referencesLoaiza, N. R, Avendaño, D, Otero, A, y Morales, E. (2010). Crecimiento, producción de pigmentos y proteínas de la microalga Dunaliella viridis (Chlorophyta) en cultivos semicontinuos. Boletín del Centro de Investigaciones Biológicas, 42(3).spa
dc.relation.referencesLópez, P. (2012). Efecto del consumo de astaxantina en la salud. Barcelona. España: Universidad Abierta de Cataluña.spa
dc.relation.referencesLorenz, R. T, y Cysewski, G. R. (2004). Commercial potential for Haematococcus microalgae as a natural source of astaxanthin. Trends in Biotechnology.spa
dc.relation.referencesMa, R, Thomas-Hall, S. R, Chua, E. ., Eltanahy, E, Netzel, M. E, Netzel, G y Schenk, P. M. (2018). Blue light enhances astaxanthin biosynthesis metabolism and extraction 65 efficiency in Haematococcus pluvialis by inducing haematocyst germination. Algal research, 35: 215-222.spa
dc.relation.referencesMartínez L. (2008). Eliminación de CO2 con microalgas autóctonas. Tesis Doctoral, Instituto de Recursos Naturales, Universidad de León, León, 226pp.spa
dc.relation.referencesMartínez, A. (2010). Evaluación del crecimiento celular y de los pigmentos obtenidos de la microalga Haematococcus pluvialis (Chlorophyta: Volvocales) cultivada en diferentes medios. México DF, México: Centro de Investigación en Ciencia Aplicada y Tecnología avanzada.spa
dc.relation.referencesMckim y Durnford. (2006). regulación traslacional de la expresión compleja de recolección de luz durante la aclimatación fotográfica a alta luz en chlamydomonas reinhardtii. fisiología vegetal y bioquímica, 44; 11-12, 857-865.spa
dc.relation.referencesMD Guiry en Guiry, MD y Guiry, GM. (2020). AlgaeBase.spa
dc.relation.referencesMelis, A. (2009). Solar energy conversion efficiencies in photosynthesis: Minimizing the chlorophyll antennae to maximize efficiency. Plant Science, 177(4), 272-280.spa
dc.relation.referencesMiranda, Alejandra M, Ossa, Edgar A, Vargas, Gabriel J, y Sáez, Alex A. (2019). Efecto de las Bajas Concentraciones de Nitratos y Fosfatos sobre la Acumulación de Astaxantina en Haematococcus pluvialis UTEX 2505. Información tecnológica, 30(1), 23-32. https://dx.doi.org/10.4067/S0718-07642019000100023spa
dc.relation.referencesMonkonsit S, Powtongsook S, y Pavasant P. (2011). Comparison between airlift Photobioreactor and Bubble Column for Skeletonema costatum cultivation. Engineering Journal 15, ISSN 0125-8281.spa
dc.relation.referencesNunes M, Vieira A, Pinto E, Carneiro A. (2013). Carotenogenese em células de Haematococcus pluvialis induzidas pelos estresses luminoso e nutricional. Pesquisa Agropecuaria Brasileira 48 (8): 825-832.spa
dc.relation.referencesOrosa M, Franqueira D, Cid A, Abalde J. (2005). Analysis and enhancement of astaxanthin accumulation in Haematococcus pluvialis. Bioresource Technology, 96 373–378)spa
dc.relation.referencesOrtega-Salas, A. A, y Reyes-Bustamante, H. (2012). Cultivo de las microalgas dulceacuícolas Kirchneriella obesa, Scenedesmus quadricauda y Chlorococcum infusorium empleando tres medios de cultivo. Avances en Investigación Agropecuaria, 16(2), 35-44.spa
dc.relation.referencesPark J, R Craggs y A Shilton. (2011) Wastewater treatment high rate alga biofuel production. Bioresource Tecnology 102:35-42.spa
dc.relation.referencesPerez-Garcia, O F, M Escalante, E. de-Bashan, Y. Bashan. (2011). "Heterotrophic cultures of microalgae: metabolism and potential products." Water research 45(1): 11-36.spa
dc.relation.referencesPrieto A, Pedro Cañavate J, y García-González M. (2011). Assessment of carotenoid production by Dunaliella salina in different culture systems and operation regimes. Journal of Biotechnology, 151(2): 180-185.spa
dc.relation.referencesRoldán, P. L. (2012). Efecto del Consumo de Astaxantina en la Salud. Recuperado el Mayo de 2015, de Universitat Oberta de Catalunya: http://openaccess.uoc.edu/webapps/ o2/bitstream/10609/19841/1/Lopez_2012_O2.pdf.spa
dc.relation.referencesPrieto-Guevara, M Hernández B, Gómez R, Pardo C, Atencio-Garcia y Rosa, P. (2013). Efecto de tres tipos de presas vivas en la larvicultura de bagre blanco (Sorubim cuspicaudus). Revista MVZ Córdoba, 18(3), 3790-3798. Disponible en: https://doi.org/10.21897/rmvz.149.spa
dc.relation.referencesRamírez, D. (2013). Evaluación del crecimiento y producción de astaxantina por Haematococcus pluvialis en un fotobiorreactor tipo airlift. Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia.spa
dc.relation.referencesReis, D. F (2012). Crescimento celular e produção de carotenoides pela microalga Haematococcus pluvialis. Universidade Federal Do Rio Grande Escola De Química E Alimentos. Programa DE PÓS-GRADUAÇÃO Em Engenharia E Ciência de Alimentos.spa
dc.relation.referencesRichard J. (2012). The Science of Alga Fuels: Phycology, Geology, Biophotonics, Genomics and Nanotechnology.spa
dc.relation.referencesRobles-Heredia, J.C, Sacramento-Rivero, Canedo-López, Y Marın y VilchizBravo. (2015). A multistage gradual nitrogen-reduction strategy for increased lipid productivity and nitrogen removal in wastewater using Chlorella vulgaris and Scenedesmus obliquus. Brazilian Journal of Chemical Engineering 32, 335-345.spa
dc.relation.referencesRosales N, Hassanhi, M. y Morales E. (2012). Actividad Biológica de extractos de dos cepas de la cianobacteria Nostoc. Maracaibo, Venezuela: Universidad de Zulia.spa
dc.relation.referencesRuiz J, Olivieri G, de Vree J, Bosma R, Willems P, Reith J.H, Barbosa M. (2018). Towards industrial products from microalgae, energy & environmental science, 9(10), 3036-3043.spa
dc.relation.referencesSafi C, Zebib B, Merah O, Pontalier PY, Vaca-García C. (2014). Morphology, composition, production, processing and applications of Chlorella vulgaris: a review. Renewable and Sustainable Energy Reviews 35:265-278.spa
dc.relation.referencesSarada R, Tripathi U, Ravishankar, G.A. (2002). Influence of stress on astaxanthin production in Haematococcus pluvialis grown under different culture conditions. Process Biochemistry, 37: 623–627spa
dc.relation.referencesShah, M.M, Y Liang, J.J Cheng y M Daroch. (2016). Astaxanthin-Producing Green Microalga Haematococcus Pluvialis: From Single Cell to High Value Commercial Products, Frontiers in Plant Science, 7:1-28spa
dc.relation.referencesSialve B, N Bernet y O Bernard. (2009). Anaerobic digestion of microalgae as a necessary step to make microalgal biodiesel sustainable. Biotechnology Advances 27(4): 409- 416.spa
dc.relation.referencesSila A, Kamoun Z, Ghlissi Z, Makni M, Nasri M, Sahnoun Z, Bougatef A. (2015). Ability of natural astaxanthin from shrimp by- products to attenuate liver oxidative stress in diabetic rats. Pharmacological Reports, 67:310-316.spa
dc.relation.referencesSipauba-Tavares l.H. O. Rocha. (2003). Produção de Plâncton (Fitoplâncton e Zooplâncton) para alimentação de Organismos Aquáticos. RiMa editora. São Carlos, Brasil. 106 ppspa
dc.relation.referencesT. Xi, DG Kim, SW Roh, JS Choi, YE Choi. (2016). Mejora de la producción de astaxantina utilizando Haematococcus pluvialis con una nueva estrategia de cambio de longitud de onda LED.spa
dc.relation.referencesTorzillo G, Tolga G, Oya I, Gökpinar T. (2013). Photon irradiance required to support optimal growth and interrelations between irradiance and pigment composition in the green alga Haematococcus pluvialis. Eur. J. Phycol. ; 40: 233–240.spa
dc.relation.referencesVandamme D, Foubert I, Muylaert K. (2013). Flocculation as a low-cost method for harvesting microalgae for bulk biomass production. Trends in Biotechnology 31:233-239.spa
dc.relation.referencesWan M, Zhang J, Hou D, Fan J, Li Y, Huang J y Wang J. (2014). The effect of temperatures on cell growth and astaxanthin accumulation of Haematococcus pluvialis during a light-dark cycling cultivation. Bioresource Technology, 167: 276-283.spa
dc.relation.referencesWang N, Guan B, Kong Q y Duan L. (2018). A semi-continuous cultivation method for Haematococcus pluvialis from non-motile cells to motile cells. Journal of applied phycology, 30(2), 773-781.spa
dc.relation.referencesWu Z, Chen G, Chong S, Mak N-K, Chen F, Jiang Y. (2010). Ultraviolet-B radiation improves astaxanthin accumulation in green microalga Haematococcus pluvialis. Biotechnol Lett.; 32(12):1911-1914.spa
dc.relation.referencesXin L, Hong-ying, H, Ke, G. y Ying-xue, S. (2010). Effects of different nitrogen and phosphorus concentrations on the growth, nutrient uptake, and lipid accumulation of a freshwater microalga Scenedesmus sp. Bioresource Technology, 101(14), 5494-5500.spa
dc.relation.referencesY. Gwak, YS Hwang, B. Wang, M. Kim, J. Jeong, CG Lee, Q. Hu, D. Han. (2014) Análisis comparativos de lipidomas y transcriptomas revelan una acción concertada de múltiples sistemas defensivos contra el estrés fotooxidativo en Haematococcus pluvialis.spa
dc.relation.referencesY.H, Wu J, Yang H, Y Hu, Yu. (2013). Producción de biomasa de microalgas rica en lípidos y eliminación de nutrientes por Haematococcus pluvialis en efluente secundario doméstico.spa
dc.relation.referencesZhang W, Wang J, Liu T. (2014). Attached cultivation of Haematococcus pluvialis for astaxanthin production. Bioresour. Technol. 158, 329–335.spa
dc.relation.referencesZuluaga M, V. Gueguen, D. Letourneur y G. Pavon. (2018). Astaxanthin-Antioxidant Impact on Excessive Reactive Oxygen Species Generation Induced by Ischemia and Reperfusion Injury, Chemico-Biological Interactions, 279, 145-158.spa
dc.rightsCopyright Universidad de Córdoba, 2020spa
dc.rights.accessrightsinfo:eu-repo/semantics/restrictedAccessspa
dc.rights.creativecommonsAtribución-NoComercial 4.0 Internacional (CC BY-NC 4.0)spa
dc.rights.urihttps://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/spa
dc.subject.keywordsAstaxanthineng
dc.subject.keywordsPhotoperiodeng
dc.subject.keywordsBoldeng
dc.subject.keywordsNaNO3eng
dc.subject.keywordsCell densityeng
dc.subject.keywordsBiomasseng
dc.subject.proposalAstaxantinaspa
dc.subject.proposalFotoperiodospa
dc.subject.proposalBoldspa
dc.subject.proposalNaNO3spa
dc.subject.proposalDensidad celularspa
dc.subject.proposalBiomasaspa
dc.titleEfecto del nitrato en el crecimiento y producción de astaxantina en la microalga Haematococcus pluvialis (Chlorophyta: Chlamydomonadales) cultivada en condiciones de laboratoriospa
dc.typeTrabajo de grado - Pregradospa
dc.type.coarhttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1fspa
dc.type.contentTextspa
dc.type.driverinfo:eu-repo/semantics/bachelorThesisspa
dc.type.redcolhttps://purl.org/redcol/resource_type/TPspa
dc.type.versioninfo:eu-repo/semantics/publishedVersionspa
dspace.entity.typePublication
oaire.accessrightshttp://purl.org/coar/access_right/c_16ecspa
oaire.versionhttp://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85spa
Archivos
Bloque original
Mostrando 1 - 2 de 2
No hay miniatura disponible
Nombre:
MontielOviedoJeraldyn.pdf
Tamaño:
2.06 MB
Formato:
Adobe Portable Document Format
Descripción:
No hay miniatura disponible
Nombre:
formato de Autorizacion.pdf
Tamaño:
428.47 KB
Formato:
Adobe Portable Document Format
Descripción:
Bloque de licencias
Mostrando 1 - 1 de 1
No hay miniatura disponible
Nombre:
license.txt
Tamaño:
14.48 KB
Formato:
Item-specific license agreed upon to submission
Descripción: