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Enzimas pectinolíticas de cepas de Aspergillus niger (p. Micheli, 1729) en la fermentación de residuos agroindustriales de piña (Ananas comosus) y maracuyá (Passiflora edulis)

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dc.contributor.advisorOviedo Zumaqué, Luisspa
dc.contributor.authorOsorio Diaz, Mauren Cecilia
dc.date.accessioned2022-03-23T22:42:41Z
dc.date.available2022-03-23T22:42:41Z
dc.date.issued2022-03-22
dc.description.abstractEste proyecto se enfocó en determinar la capacidad pectinolítica de las enzimas provenientes del género Aspergillus (P. Micheli, 1729), utilizando como única fuente de carbono albedo de piña, albedo de maracuyá, mezcla de albedo piña y maracuyá y pectina comercial. Se obtuvieron aislados de cultivos de piña en el corregimiento de Sarandelo del municipio de Lorica – Córdoba y cultivos de maracuyá en el municipio de Purísima. Se preseleccionaron 6 aislados de los cuales tres (M6P21, MM3 y M16P21) presentaron mayor halo de crecimiento en medio solido de pectina al 2%. En la producción enzimática los extractos fúngicos se utilizaron cuatro tratamientos: albedo de piña, albedo de maracuyá, mezcla de albedo piña y maracuyá y pectina comercial; donde los aislados Aspergillus M6P21, Aspergillus MM3 y Aspergillus M16P21 presentaron buenos resultados de la actividad enzimática analizada mediante un monitoreo de 3 días y cuyos resultados fueron expresados en concentración de azucares reductores. El aislado M6P21 presento excelentes resultados en cuanto a la producción de enzimas pectinolíticas: en albedo de piña 0,2816 g/L, en albedo de maracuyá 0,2740 g/L, en la mezcla de albedo de piña y maracuyá 0,3923 g/L y pectina comercial 0,3046 g/L. En el aislado de Aspergillus MM3: en albedo de piña 0,2856 g/L, en albedo de maracuyá 0,2694 g/L, en la mezcla de albedo de piña y maracuyá 0,2549 g/L y pectina comercial 0,3090 g/L. El aislado M16P21: en albedo de piña 0,2433 g/L, en albedo de maracuyá 0,2508 g/L, en la mezcla de albedo de piña y maracuyá 0,2625 g/L y pectina comercial 0,3175 g/L.spa
dc.description.abstractThis project focused on determining the pectinolytic capacity of enzymes from the genus Aspergillus (P. Micheli, 1729), using pineapple albedo, passion fruit albedo, a mixture of pineapple and passion fruit albedo, and commercial pectin as the only carbon source. Isolates were obtained from pineapple crops in the district of Sarandelo in the municipality of Lorica - Córdoba and passion fruit crops in the municipality of Purísima. Six isolates were preselected, of which three (M6P21, MM3 and M16P21) presented a greater growth halo in solid medium of 2% pectin. In the enzymatic production of the fungal extracts, four treatments were used: pineapple albedo, passion fruit albedo, mixture of pineapple and passion fruit albedo and commercial pectin; where the isolates Aspergillus M6P21, Aspergillus MM3 and Aspergillus M16P21 presented good results of the enzymatic activity analyzed by monitoring for 3 days and whose results were expressed in reducing sugar concentration. The isolate M6P21 presented excellent results in terms of the production of pectinolytic enzymes: in pineapple albedo 0.2816 g/L, in passion fruit albedo 0.2740 g/L, in the mixture of pineapple and passion fruit albedo 0.3923 g /L and commercial pectin 0.3046 g/L. In the Aspergillus MM3 isolate: in pineapple albedo 0.2856 g/L, in passion fruit albedo 0.2694 g/L, in the mixture of pineapple and passion fruit albedo 0.2549 g/L and commercial pectin 0.3090 g/L The isolate M16P21: in pineapple albedo 0.2433 g/L, in passion fruit albedo 0.2508 g/L, in the mixture of pineapple and passion fruit albedo 0.2625 g/L and commercial pectin 0.3175 g/L .eng
dc.description.degreelevelMaestríaspa
dc.description.degreenameMagíster en Biotecnologíaspa
dc.description.modalityTrabajos de Investigación y/o Extensiónspa
dc.description.tableofcontentsINTRODUCCION .............................................................................................................. 15spa
dc.description.tableofcontents2. OBJETIVOS ................................................................................................................ 17spa
dc.description.tableofcontents2.1. Objetivos específicos ............................................................................................ 17spa
dc.description.tableofcontents3. MARCO TEORICO ................................................................................................... 18spa
dc.description.tableofcontents3.1. Pectina ................................................................................................................... 18spa
dc.description.tableofcontents3.1.1. Estructura de las pectinas ............................................................................ 19spa
dc.description.tableofcontents3.1.2. Clasificación de las pectinas......................................................................... 20spa
dc.description.tableofcontents3.1.3. Fuente de obtención de las pectinas en la industria .................................. 21spa
dc.description.tableofcontents3.2. Propiedades de las pectinas ................................................................................. 22spa
dc.description.tableofcontents3.3. Genero Aspergillus ................................................................................................ 23spa
dc.description.tableofcontents3.3.1. Aspergillus niger............................................................................................. 24spa
dc.description.tableofcontents3.3.2. Utilidad de Aspergillus en la industria ........................................................ 24spa
dc.description.tableofcontents3.4. Enzimas pectinolíticas ......................................................................................... 25spa
dc.description.tableofcontents3.4.1. Clasificación de las enzimas pécticas .......................................................... 26spa
dc.description.tableofcontents3.4.2. Usos de enzimas pectinolíticas ..................................................................... 27spa
dc.description.tableofcontents3.5. Tecnología de las fermentaciones ....................................................................... 28spa
dc.description.tableofcontents3.5.1. Fermentación en estado solido..................................................................... 29spa
dc.description.tableofcontents3.5.2. Fermentación sumergida ............................................................................. 29spa
dc.description.tableofcontents3.6. Piña (Ananas comosus) ......................................................................................... 30spa
dc.description.tableofcontents3.7. Maracuyá ( Passiflora edulis) ............................................................................. 32spa
dc.description.tableofcontents4. METODOLOGÍA ....................................................................................................... 34spa
dc.description.tableofcontents4.1. Localización .......................................................................................................... 34spa
dc.description.tableofcontents4.2. Caracterización de hongos del género aspergillus asociados a los frutos de piña y maracuyá. ............................................................................................................. 34spa
dc.description.tableofcontents4.2.1. Recolección de muestras .............................................................................. 34spa
dc.description.tableofcontents4.2.2. Aislamiento de hongos Aspergillus niger ..................................................... 35spa
dc.description.tableofcontents4.3. Determinación la capacidad pectinolítica de hongos seleccionados utilizando sus extractos enzimáticos en albedo: piña, maracuyá, piña/maracuyá y pectina comercial. ......................................................................................................................... 36spa
dc.description.tableofcontents4.3.2. Inducción a la producción de pectinasas. ................................................... 37spa
dc.description.tableofcontents4.3.3. Ensayo enzimático de poligalacturonasa. ................................................... 37spa
dc.description.tableofcontents4.3.4. Análisis de capacidad enzimática por el método DNS de los azucares reductores. .................................................................................................................... 37spa
dc.description.tableofcontents4.4. Evaluación de las condiciones óptimas de pH de fermentación sumergida de los aislados seleccionados para la producción y actividad de las pectinasas. ............ 38spa
dc.description.tableofcontents4.4.1. Variación en el pH del medio de cultivo liquido de pectina cítrica comercial. ..................................................................................................................... 38spa
dc.description.tableofcontents4.5. Determinar el efecto clarificante de las enzimas pectinolíticas en jugos de frutas. ............................................................................................................................... 38spa
dc.description.tableofcontents5. DISEÑO EXPERIMENTAL ...................................................................................... 39spa
dc.description.tableofcontents6. RESULTADOS Y DISCUSIÓN ................................................................................. 40spa
dc.description.tableofcontents6.1. Caracterización de aislados de hongos con propiedades pectinolíticas. ......... 40spa
dc.description.tableofcontents6.1.1. Aislado aspergillus M6P21 ........................................................................... 42spa
dc.description.tableofcontents6.1.2. Aislado Aspergillus MM3.............................................................................. 43spa
dc.description.tableofcontents6.1.3. Aislado Aspergillus M16P21 ......................................................................... 44spa
dc.description.tableofcontents6.2. Determinación de la capacidad pectinolítica hongos seleccionados utilizando sus extractos enzimáticos en albedo de piña, maracuyá, piña/ maracuyá y pectina comercial. ......................................................................................................................... 47spa
dc.description.tableofcontents6.3. Evaluación de las condiciones óptimas de pH en la fermentación sumergida de los aislados seleccionados para la producción y actividad de las pectinasas. ....... 52spa
dc.description.tableofcontents6.4. Determinar el efecto clarificante de las enzimas pectinolíticas en jugos de frutas mediante turbidez. ............................................................................................... 56spa
dc.description.tableofcontentsCONCLUSIONES .............................................................................................................. 60spa
dc.description.tableofcontentsBIBLIOGRAFÍA ................................................................................................................ 61spa
dc.description.tableofcontentsRECOMENDACIONES .................................................................................................... 69spa
dc.format.mimetypeapplication/pdfspa
dc.identifier.urihttps://repositorio.unicordoba.edu.co/handle/ucordoba/5024
dc.language.isospaspa
dc.publisherUniversidad de Córdoba
dc.publisher.facultyFacultad de Ciencias Básicasspa
dc.publisher.placeMontería, Córdoba, Colombiaspa
dc.publisher.programMaestría en Biotecnologíaspa
dc.rightsCopyright Universidad de Córdoba, 2022spa
dc.rights.accessrightsinfo:eu-repo/semantics/openAccessspa
dc.rights.creativecommonsAtribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0 Internacional (CC BY-NC-ND 4.0)spa
dc.rights.urihttps://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/spa
dc.subject.keywordsPectinolytic enzymesspa
dc.subject.keywordsJuice clarificationspa
dc.subject.keywordsEnzymatic activityspa
dc.subject.keywordsAnanas comosusspa
dc.subject.keywordsPassiflora edulisspa
dc.subject.proposalEnzimas pectinoliticasspa
dc.subject.proposalClarificación de jugosspa
dc.subject.proposalActividad enzimáticaspa
dc.subject.proposalAnanas comosusspa
dc.subject.proposalPassiflora edulisspa
dc.titleEnzimas pectinolíticas de cepas de Aspergillus niger (p. Micheli, 1729) en la fermentación de residuos agroindustriales de piña (Ananas comosus) y maracuyá (Passiflora edulis)spa
dc.typeTrabajo de grado - Maestríaspa
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