Publicación:
Producción de astaxantina en Haematococcus pluvialis (Flotow, 1844) expuesta a diferentes longitudes de onda durante sus etapas de crecimiento

dc.contributor.advisorMogollón Arismendy, Martha
dc.contributor.authorPuche Otero, Cecilia
dc.contributor.juryRODRIGUEZ CALONGE, ESCILDA ROSA
dc.contributor.juryArango Rivas, Carolina
dc.date.accessioned2025-01-30T21:09:47Z
dc.date.available2025-01-30T21:09:47Z
dc.date.issued2025-01-30
dc.description.abstractHaematococcus pluvialis es una microalga conocida por su capacidad de acumular astaxantina, un carotenoide secundario y antioxidante con numerosas aplicaciones en la industria. La variabilidad de las longitudes de onda que inciden sobre las microalgas durante su crecimiento es un factor físico que puede influir significativamente en la producción de astaxantina. Estudios previos han demostrado que las microalgas responden de manera diferente a la luz, lo que puede afectar su tasa de crecimiento y su capacidad para acumular. Optimizar el proceso de producción de astaxantina en H. pluvialis podría contribuir a la eficiencia y sostenibilidad de la industria de la biotecnología de microalgas y cumplir con la creciente demanda de este carotenoide en el mercado. El objetivo de este estudio fue evaluar la incidencia de luz roja y azul sobre la producción de Astaxantina en H. pluvialis durante sus etapas de crecimiento. La cepa fue mantenida bajo continuos repliques y en condiciones controladas de temperatura, pH, luz continua. Los cultivos se escalaron en medio bold a partir de 10 mL de volumen hasta alcanzar los 2 L. Luego de esto se procedió a hacer la siembra en Erlenmeyer de 500 mL, donde se agregó 400 mL de medio y un inoculo de suspensión algal de 100 mL. Para cada ensayo se realizaron tres replicas por cada tratamiento. La estimación de los parámetros de densidad celular, tasa de crecimiento y tiempo de duplicación fueron calculados según lo propuesto por Arredondo y Voltolina (2007) y, por último, se sometieron los cultivos a diferentes longitudes de onda con luces LED: de roja a azul estableciendo como control un cultivo con luz blanca en condiciones ambientales controladas por un periodo de 18 días. La producción de astaxantina se evaluó en las tres fases del cultivo y para la extracción de astaxantina se siguió la metodología propuesta por (APHA, 1992). Los resultados demostraron que tanto para el crecimiento celular como para la producción de astaxantina en esta microalga, la longitud de onda con luz blanca fue la más adecuada. Las diferentes condiciones de estrés que se emplean en el cultivo de H. pluvialis, permiten que los carotenoides secundarios se sinteticen en mayores cantidades, debido a los mecanismos de protección que se generan en la microalga.spa
dc.description.abstractHaematococcus pluvialis is a microalgae known for its ability to accumulate astaxanthin, a secondary carotenoid and antioxidant with numerous applications in industry. The variability of wavelengths that hit microalgae during their growth is a physical factor that can significantly influence astaxanthin production. Previous studies have shown that microalgae respond differently to light, which can affect their growth rate and their ability to accumulate astaxanthin. Optimizing the astaxanthin production process in H. pluvialis could contribute to the efficiency and sustainability of the microalgae biotechnology industry and meet the growing demand for this carotenoid in the market. The aim of this study was to evaluate the incidence of red and blue light on the production of astaxanthin in H. pluvialis during its growth stages. The strain was maintained under continuous replicates and under controlled conditions of temperature, pH, continuous light. The cultures were scaled up in Bold medium from 10 mL volume up to 2 L. After this, the seeding was done in 500 mL Erlenmeyer flask, where 400 mL of medium and an inoculum of algal suspension of 100 mL were added. For each test, three replicates were made for each treatment. The estimation of the parameters of cell density, growth rate and duplication time were calculated as proposed by Arredondo and Voltolina (2007) and, finally, the cultures were subjected to different wavelengths with LED lights: from red to blue, establishing as a control a culture with white light in controlled environmental conditions for a period of 18 days. The production of astaxanthin was evaluated in the three phases of the culture and for the extraction of astaxanthin the methodology proposed by (APHA, 1992) was followed. The results showed that for both cell growth and astaxanthin production in this microalga, the white light wavelength was the most suitable. The different stress conditions used in the cultivation of H. pluvialis allow secondary carotenoids to be synthesized in greater quantities, due to the protection mechanisms generated in the microalga.eng
dc.description.degreelevelPregrado
dc.description.degreenameBiólogo(a)
dc.description.modalityTrabajos de Investigación y/o Extensión
dc.description.tableofcontents1. RESUMEN .......................................... 13
dc.description.tableofcontents2. ABSTRACT........................................... 14
dc.description.tableofcontents3. INTRODUCCIÓN ........................... 15
dc.description.tableofcontents4. OBJETIVOS .................................... 17
dc.description.tableofcontents4.1 Objetivo general................................... 17
dc.description.tableofcontents4.2 Objetivos específicos.......................................... 17
dc.description.tableofcontents5. MARCO TEÓRICO........................................ 18
dc.description.tableofcontents5.1 Generalidades de las microalgas................................... 18
dc.description.tableofcontents5.1.1 Parámetros de cultivo .............................................. 19
dc.description.tableofcontents5.1.2 Crecimiento de las microalgas..................... 21
dc.description.tableofcontents5.1.3 Haematococcus pluvialis.................... 23
dc.description.tableofcontents5.1.4 Astaxantina.................................... 26
dc.description.tableofcontents6. ANTECEDENTES.................................... 28
dc.description.tableofcontents7. METODOLOGÍA ............................................ 30
dc.description.tableofcontents7.1 Localización.................................................. 30
dc.description.tableofcontents7.2 Preparación del medio de cultivo...................... 31
dc.description.tableofcontents7.2.1 Condiciones del cultivo .............................. 32
dc.description.tableofcontents7.2.2 Crecimiento poblacional de Haematococcus pluvialis...................... 34
dc.description.tableofcontents7.3 Determinación de astaxantina.................................... 36
dc.description.tableofcontents7.3.1 Cuantificación de astaxantina por espectrofotometría ultravioleta visible .............. 37
dc.description.tableofcontents7.4 Análisis de datos .............................. 37
dc.description.tableofcontents8. RESULTADOS................................ 38
dc.description.tableofcontents8.1 Densidad celular............................... 38
dc.description.tableofcontents8.1.1 Tasa de crecimiento y tiempo de duplicación.................. 39
dc.description.tableofcontents8.2 Contenido de astaxantina.......................... 40
dc.description.tableofcontents8.3 Caracterización microscópica de H. pluvialis....................... 41
dc.description.tableofcontents9. DISCUSIÓN ....................................... 44
dc.description.tableofcontents9.1 Parámetros de crecimiento............................ 44
dc.description.tableofcontents9.2 Concentración de astaxantina ........................... 45
dc.description.tableofcontents9.3 Caracterización microscópica .................... 47
dc.description.tableofcontents10. CONCLUSIONES ....................................... 48
dc.description.tableofcontents11. RECOMENDACIONES ............................... 49
dc.description.tableofcontents12. BIBLIOGRAFÍA........................................... 50
dc.description.tableofcontents13. ANEXOS ....................................................... 57
dc.format.mimetypeapplication/pdf
dc.identifier.instnameUniversidad de Córdoba
dc.identifier.reponameRepositorio Universidad de Córdoba
dc.identifier.repourlhttps://repositorio.unicordoba.edu.co/
dc.identifier.urihttps://repositorio.unicordoba.edu.co/handle/ucordoba/8964
dc.language.isospa
dc.publisherUniversidad de Córdoba
dc.publisher.facultyFacultad de Ciencias Básicas
dc.publisher.placeMontería, Córdoba, Colombia
dc.publisher.programBiología
dc.relation.referencesAbalde J, Orosa G, Torres, Cid E. (2003). Biotecnología y aplicaciones de microorganismos pigmentados: IV Simposio científico en biología celular y molecular. 95-117. ISBN: 84-95322-04-8
dc.relation.referencesA. Hernández-Pérez, J. I. Labbé. Microalgas, cultivo y beneficios. Revista de Biología Marina y Oceanografía. 2014; 49:157–173.
dc.relation.referencesAmbati, RR, Phang, SM, Ravi, S. y Aswathanarayana, RG (2014). Astaxantina: fuentes, extracción, estabilidad, actividades biológicas y sus aplicaciones comerciales: una revisión. Drogas marinas, 12(1), 128-152.
dc.relation.referencesAPHA, American Public Health Association, American Waterworks, Association (AWWA), Water Pollution Control Federation (WPCF). Standard Methods for Examination of Water and Sewage and Wastewater. 20a ed. New York; 1992.
dc.relation.referencesAlgatechnologies Ltd. (2015). Alga technologies. Recuperado del sitio web: http://www.algatech.com/products-item.asp?cat=001_.
dc.relation.referencesÂ. P. Matos, M. G. Cavanholi, E. H. S. Moecke, and E. S. Sant’Anna, “Effects of different photoperiod and trophic conditions on biomass, protein and lipid production by the marine alga Nannochloropsis gaditana at optimal concentration of desalination concentrate,” Bioresour Technol, vol. 224, pp. 490–497, 2017, doi: 10.1016/j.biortech.2016.11.004.
dc.relation.referencesBenavente, J., Montañez, J., Aguilar, C., Mendez, A., & Valdivia, B. (2012). Tecnología de Cultivo de Microalgas en Fotobiorreactores. Revista Científica de La Universidad Autónoma de Coahuila, 4(7).
dc.relation.referencesBegum, H., Yusoff, F.M.D., Banerjee, S., Khatoon, H., Shariff, M., 2016. Availability and Utilization of Pigments from Microalgae. Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 56, 2209–2222. https://doi.org/10.1080/10408398.2013.764841
dc.relation.referencesBennett A, Bogorad L. Complementary chromatic adaptation in a filamentous bluegreen alga. J Cell Biol. 1973; 58(2):419–35.
dc.relation.referencesBrenan, M., Owende, P. (2010) Biofuels from microalgae - A review of technologies for production,processing, and extraction of biofuels and co-products. Renewable and Sustainable Energy Reviews 14,557-577.
dc.relation.referencesCapelli, B. y Cysewsky, G. (2006). Astaxantina natural: la reina de los carotenoides. http://www.bioxantin.cl/temas/Book.pdf.
dc.relation.referencesChristian D, Zhang J, Sawdown A, Pen C. Enhanced astaxanthin accumulation in Haematococcus pluvialis using high carbon dioxide concentration and light illumination. Bioresour Technol. 2018; 256:548-551
dc.relation.referencesCórdoba N, Acero N, Duque L, Jimenez L, Serna J. (2015). Obtención y caracterización de astaxantina de la microalga Haematococcus pluvialis.
dc.relation.referencesDe Mejia, E.G., Zhang, Q., Penta, K., Eroglu, A., Lila, M.A., 2020. The Colors of Health: Chemistry, Bioactivity, and Market Demand for Colorful Foods and Natural Food Sources of Colorants. Annu. Rev. Food Sci. Technol. 11, 145–182. https://doi.org/10.1146/annurev-food032519-051729
dc.relation.referencesDominguez A., Ferreira, M., Coutinho, P., Fábregas, J., y Otero, A. (2005). Delivery of astaxanthin from Haematococcus pluvialis to the aquaculture food chain. Aquaculture, 250, 424-430.
dc.relation.referencesDomínguez, Fábregas, J, y Otero, A. (2006). Astaxantina, el oro rojo de la microalga Haematoccocus pluvialis. Boletín de la Sociedad Española de Ficología, 35: 4-9.
dc.relation.referencesDragos, N, Bercea, V, Bica, A, Druga, B, Nicoara, A Y Coman, C. (2010) Astaxanthin production from a new strain of Haematococcus pluvialis Grown in batch culture. Annals of the Romanian Society for Cell Biology 15(2).353-361.
dc.relation.referencesFábregas, J., Domínguez, A., Maseda, A., & Otero, A. (2003). Interactions between irradiance and nutrient availability during astaxanthin accumulation and degradation in Haematococcus pluvialis. Applied Microbiology and Biotechnology, 61(5–6), 545–551. https://doi.org/10.1007/s00253-002-1204-4
dc.relation.referencesFogg G. E., Thake B. 1987. Algae Cultures and Phytoplankton Ecology. 3rd edn. London: The University of Wisconsins Press, p. 269.
dc.relation.referencesFulks, W. y Main, K. L. (1991). The design y operation of live feeds production system. En: Fulks, W. y Main, K. L. (Eds.). Rotifer and micro-algae culture system. Proc. US-Asia Works. Ocean Inst. Hawaii, USA. Pp. 3-52.
dc.relation.referencesGarcia M C, Del Rio E, Casas J, Fernández F, Fernández J, Rivas J, et al. Comparative analysis of the outdoor culture of Haematococcus pluvialis in tubular and bubble column photobioreactors. 2006. Disponible en: https://www.academia.edu/4108592/Comparative_analysis_of_the_outdoor_culture_of_Haematococcus_pluvialis_in_tubular_and_bubble_column_photobioreactors
dc.relation.referencesGarcía-Álvarez E. Efecto de la composición espectral de la de la luz en la composición bioquímica y estandarización de procedimientos para el análisis de la expresión génica de Arthrospira (Spirulina) maxima. Tesis de Maestría en Ciencias. Vol. 87. Baja California; 2022.
dc.relation.referencesGrahám, L.E., Wilcox, L.W.2000. Introduction to the Algae. Algae. Prentice-Hall, Inc., Upper Saddle River, NJ, pp. 1-20.
dc.relation.referencesGranda G. (2015). PRODUCCIÓN DE ASTAXANTINA A PARTIR DE LA MICROALGA HAEMATOCOCCUS PLUVIALIS. Available from: http://dspace.udla.edu.ec/bitstream/33000/4183/1/UDLA-EC-TIB-2015-04%28S%29.pdf
dc.relation.referencesGrobbelaar Ju. (2004). Algal Nutrition: Mineral Nutrition. in: Richmond a (ed). handbook of microalgal culture: biotechnology and applied phycology, pp. 97-115.
dc.relation.referencesHeffernan, W.J.B., Frater, L.P. & Watson, N.R. (2007). LED replacement for fluorescent tube lighting. Australacian Universities power engineering conference, Perth, Australia. https://DOI: 10.1109/aupec.2017.4548064
dc.relation.referencesInborr, J. (1998). Haematococcus, the Poultry Pigmentor. Feed Mix, 6(2), 31-34.
dc.relation.referencesJaramillo R. Producción de Astaxantina a partir de la microalga Haematococcus Pluvialis. Facultad de Ingenierías y Ciencias Agropecuarias. UDLA. 2015. 66 p.
dc.relation.referencesKatsuda T, Lababpour A, Shimahara K, Katoh S. Astaxanthin production by Haematococcus pluvialis under illumination with LEDs. Enzyme Microb Technol. 2004; 35(1):81-86.
dc.relation.referencesLababpour A, Hada K, Shimahara K, Katsuda T, Katoh S. Effects of nutrient supply methods and illumination with blue light emitting diodes (LEDs) on astaxanthin production by Haematococcus pluvialis. J Biosci Bioeng. 2004; 98(6):452-456.
dc.relation.referencesLababpour A, Shimara K, Hada K, Kyoui Y, Katsuda T, Katoh S. Fed-batch culture under illumination with blue light emitting diodes (LEDs) for staxanthin production by Haematococcus pluvialis. J Biosci Bioeng. 2005 Sep; 100(3): 339-4.
dc.relation.referencesLópez, P. (2012). Efecto del consumo de astaxantina en la salud. Barcelona. España: Universidad Abierta de Cataluña.
dc.relation.referencesLorenz, RT y Cysewski, GR (2000). Potencial comercial de la microalga Haematococcus como fuente natural de astaxantina. Tendencias en biotecnología, 18(4), 160-167.
dc.relation.referencesMarkou G. Effect of various colors of light-emitting diodes (LEDs) on the biomass composition of Arthrospira platensis cultivated in semi-continuous mode. Appl Biochem Biotechno. 2014;172(5):2758–68.
dc.relation.referencesMartínez, A. (2010). Evaluación del crecimiento celular y de los pigmentos obtenidos de la microalga Haematococcus pluvialis (Chlorophyta: Volvocales) cultivada en diferentes medios. México DF, México: Centro de Investigación en Ciencia Aplicada y Tecnología avanzada.
dc.relation.referencesMartínez-Silva, A. S. (2011). Evaluación del crecimiento celular y de los pigmentos obtenidos de la microalga Haematococcus pluvialis (Chlorophyta: Volvocales) cultivada en diferentes medios (Disertación doctoral). Instituto Técnico Nacional, Ciudad de México, México.
dc.relation.referencesMckim y Durnford. (2006). regulación traslacional de la expresión compleja de recolección de luz durante la aclimatación fotográfica a alta luz en chlamydomonas reinhardtii. fisiología vegetal y bioquímica, 44; 11-12, 857-865.
dc.relation.referencesMulders, K.J.M., Lamers, P.P., Martens, D.E., Wijffels, R.H., 2014. Phototrophic pigment production with microalgae: Biological constraints and opportunities. J. Phycol. 50, 229–242. https://doi.org/10.1111/jpy.12173
dc.relation.referencesNiño CM, Rodríguez FC, Díaz LE, Lancheros AG. 2017. Evaluación de las condiciones de crecimiento celular para la producción de astaxantina a partir de la microalga Haematococcus pluvialis.
dc.relation.referencesN. S. Yusof, Y. S. Yeong, H. A. Zakeri, M. E. A. Wahid, S. N. A. Ghafar, and N. Yusuf, “Photoperiod influenced the growth and antioxidative responses of Chlorella vulgaris, Isochrysis galbana, and Tetraselmis chuii,” J Appl Pharm Sci, vol. 11, no. 4, pp. 125–134, Apr. 2021, doi: 10.7324/JAPS.2021.110415.
dc.relation.referencesOpenStax, The Light-Dependent Reactions of Photosynthesis. OpenStax CNX. 9 de octubre de 2013.
dc.relation.referencesOrtega-Salas, A. A, y Reyes-Bustamante, H. (2012). Cultivo de las microalgas dulceacuícolas Kirchneriella obesa, Scenedesmus quadricauda y Chlorococcum infusorium empleando tres medios de cultivo. Avances en Investigación Agropecuaria, 16(2), 35-44.
dc.relation.referencesPereira, S., & Otero, A. (2020). Haematococcus pluvialis bioprocess optimization: Effect of light quality, temperature and irradiance on growth, pigment content and photosynthetic response. Algal Research, 51, 102027. https://doi.org/10.1016/j.algal.2020.102027
dc.relation.referencesPrieto-Guevara, M., Hernández B, J., Gómez R, C., Pardo C, S., Atencio-García, V., & Rosa, PV (2013). Efecto de tres tipos de presas vivas en la larvicultura de bagre blanco (Sorubim cuspicaudus). Revista MVZ Córdoba, 18 (3),3790-3798. ISSN: 0122-0268. Recuperado de: https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=69329149007
dc.relation.referencesRammunia M, Ariyadasaa T, Nimarshana P, and Attalage R. Comparative assessment on the extraction of carotenoids from microalgal sources: Astaxanthin from H. pluvialis and β-carotene from D. salina Food Chemistry. 2019. 277; 128-134 Available
dc.relation.referencesRamírez, D. (2013). Evaluación del crecimiento y producción de astaxantina por Haematococcus pluvialis en un fotobiorreactor tipo airlift. Available from: http://bdigital.unal.edu.co/11205/1/300061.2013.pdf
dc.relation.referencesRichmond, A. (2004). Handbook of microalgal culture biotechnology and applied phycology. Available from: https://onlinelibrary.wiley.com/doi/book/10.1002/9781118567166
dc.relation.referencesRuijuan Ma, Skye R., Elvis T, Faisal A at eal Gene expression profiling of astaxanthin and fatty acid pathways in Haematococcus pluvialis in response to different LED lighting conditions Bioresour Technol. 2018. 250; 591-602 Available in: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0960852417320989?via%3Dihub
dc.relation.referencesShah, MM, Liang, Y., Cheng, JJ y Daroch, M. (2016). Microalga verde productora de astaxantina Haematococcus pluvialis: desde células unicelulares hasta productos comerciales de alto valor. Fronteras en la ciencia vegetal, 7, 531.
dc.relation.referencesSila A, Kamoun Z, Ghlissi Z, Makni M, Nasri M, Sahnoun Z, Bougatef A. (2015). Ability of natural astaxanthin from shrimp by- products to attenuate liver oxidative stress in diabetic rats. Pharmacological Reports, 67:310-316.
dc.relation.referencesSipaúba L, Berchielli F, Scardoeli B. Growth of Haematococcus pluvialis Flotow in alternative media. Brazilian Journal of Biology. 2015; 75(4): pp 796-803
dc.relation.referencesSun, H., Kong, Q., Geng, Z., Duan, L., Yang, M., & Guan, B. (2015). Enhancement of cell biomass and cell activity of astaxanthin-rich Haematococcus pluvialis. Bioresource technology, 186, 67-73. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2015.02.101
dc.relation.referencesTorzillo G, Tolga G, Oya I, Gökpinar T. (2013). Photon irradiance required to support optimal growth and interrelations between irradiance and pigment composition in the green alga Haematococcus pluvialis. Eur. J. Phycol.; 40: 233–240.
dc.relation.referencesTran, H. L., Lee, K. H., & Hong, C. H. (2015). Effects of ledirradiation on the growth and Astaxanthin Production of Haematococcus lacustris. Biosciences Biotechnology Research Asia, 12(2), 1167-1173. https://doi.org/10.13005/bbra/1769
dc.relation.referencesWalter, A., Carvalho, J. C. D., Soccol, V. T., Faria, A. B. B. D., Ghiggi, V., & Soccol, C. R. Study of phycocyanin production from Spirulina platensis under different light spectra. Brazilian Archives of Biology and Technology. 2011; 54(4), 675-682.
dc.relation.referencesWan, M., Zhang, J., Hou, D., Fan, J., Li, Y., Huang, J., & Wang, J. (2014). The effect of temperature on cell growth and astaxanthin accumulation of Haematococcus pluvialis during a light–dark cyclic cultivation. Bioresource Technology, 167, 276–283. https://doi.org/10.1016/J.BIORTECH.2014.06.030
dc.relation.referencesWang, C. Y., Fu, C. C., & Liu, Y. C. Effects of using light-emitting diodes on the cultivation of Spirulina platensis. Biochemical Engineering Journal. 2007; 37(1), 2125.
dc.relation.referencesWong Y, Ho Y, Ho K, Lai Y,Tsang P, Chow K, Yau Y, Choi M, Ho R. 2016. Effects of light intensity, illumination cycles on microalgae Haematococcus pluvialis for production of astaxanthin. Journal of marine biology and acquaculture.
dc.relation.referencesXi, T., Kim, D. G., Roh, S. W., Choi, J. S., y Choi, Y. E. (2016). Enhancement of astaxanthin production using Haematococcus pluvialis with novel LED wavelength shift strategy. Applied Microbiology and Biotechnology, 100(14), 6231-6238. https://doi.org/10.1007/s00253-016-7301-6
dc.relation.referencesZhao, K., Li, Y., Yan, H., Hu, Q., & Han, D. (2022). Regulation of Light Spectra on Cell Division of the Unicellular Green Alga Haematococcus pluvialis: Insights from Physiological and Lipidomic Analysis. Cells (Basel, Switzerland), 11(12), 1956. https://doi.org/10.3390/cells11121956
dc.rightsCopyright Universidad de Córdoba, 2025
dc.rights.accessrightsinfo:eu-repo/semantics/openAccess
dc.rights.coarhttp://purl.org/coar/access_right/c_abf2
dc.rights.licenseAtribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0 Internacional (CC BY-NC-ND 4.0)
dc.rights.urihttps://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/
dc.subject.keywordsAstaxanthineng
dc.subject.keywordsCell growtheng
dc.subject.keywordsHaematococcus pluvialiseng
dc.subject.keywordsWavelengtheng
dc.subject.keywordsMicroalgaeeng
dc.subject.proposalAstaxantinaspa
dc.subject.proposalCrecimiento celularspa
dc.subject.proposalHaematococcus pluvialisspa
dc.subject.proposalLongitud de ondaspa
dc.subject.proposalMicroalgasspa
dc.titleProducción de astaxantina en Haematococcus pluvialis (Flotow, 1844) expuesta a diferentes longitudes de onda durante sus etapas de crecimientospa
dc.typeTrabajo de grado - Pregrado
dc.type.coarhttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1f
dc.type.coarversionhttp://purl.org/coar/version/c_ab4af688f83e57aa
dc.type.contentText
dc.type.driverinfo:eu-repo/semantics/bachelorThesis
dc.type.versioninfo:eu-repo/semantics/acceptedVersion
dspace.entity.typePublication
Archivos
Bloque original
Mostrando 1 - 2 de 2
No hay miniatura disponible
Nombre:
AutorizaciónPublicación..pdf
Tamaño:
313.33 KB
Formato:
Adobe Portable Document Format
Cargando...
Miniatura
Nombre:
PucheOteroCecilia.pdf
Tamaño:
2.05 MB
Formato:
Adobe Portable Document Format
Bloque de licencias
Mostrando 1 - 1 de 1
No hay miniatura disponible
Nombre:
license.txt
Tamaño:
15.18 KB
Formato:
Item-specific license agreed upon to submission
Descripción: