Publicación: Crioconservación de semen de dorada Brycon sinuensis con diferentes crioprotectores a dos porcentajes de inclusión
dc.contributor.advisor | Atencio García, Víctor Julio | spa |
dc.contributor.advisor | Espinosa Araújo, José Alonso | |
dc.contributor.author | Carmona Calderón, Jorge Armando | |
dc.contributor.datamanager | Instituto de Investigación Piscícola de la Universidad de Córdoba | |
dc.date.accessioned | 2021-09-07T16:12:56Z | |
dc.date.available | 2021-09-07T16:12:56Z | |
dc.date.issued | 2021-09-06 | |
dc.description.abstract | El objetivo del estudio fue evaluar la criopreservación de semen de dorada Brycon sinuensis con dimetilsulfóxido (DMSO), dimetilacetamida (DMA) o etilenglicol (EG) a dos porcentajes de inclusión (5 o 10%); para lo cual se indujeron 12 machos con 5 mg extracto hipofisario de carpa por Kg de peso y seis horas después el semen fue colectado en tubos Falcón de 20 ml. El semen fue diluido (1:4) en la solución crioprotectora compuesta por glucosa 6%, yema de huevo 12% y DMSO o DMA o EG a dos porcentajes de inclusión (5 o 10%); luego fue empacado en pajillas de 2.5 mL y congelado en vapores de nitrógeno líquido (NL) durante 30 minutos y posteriormente almacenadas en NL en termos de 34 L. El semen fue descongelado por inmersión directa en baño serológico a 35°C durante 60 segundos. La calidad del semen fresco, precongelado y descongelado fue evaluada con la ayuda del software Sperm Class Analyzer (SCA, Microptic, España) y un microscopio de contraste de fase (Nikon E55, Japón) mediante la movilidad total, tipos de movilidad (rápida, media, lenta), espermatozoides inmóviles, velocidades (lineal y curvilínea), progresividad total y concentración espermática. Además, en el semen descongelado, se evaluaron los daños en membrana espermática (D-Mem), en mitocondria (D-Mit) y fragmentación de DNA (F-DNA) mediante citometría de flujo (Citómetros FACS CANTO II, BD Biosciences San José, CA y LSR 2 FORTESSA) (BD Biosciences San José, CA). El semen fresco presentó alta movilidad total (97.07.0%); mientras que en semen precongelado (82.517.9%) y descongelado (45.413.6%) fue mayor cuando fue tratado con DMSO10% (p<0.05). En semen descongelado los D-Mem oscilaron entre 62.118.8% (DMA 5%) y 49.89.8% (DMSO 5%), los D-Mit oscilaron entre 59.414.8% (DMA 5%) y 83.44.2% (DMSO 10%) y F-DNA oscilaron entre 9.5±14.0% (EG10%) y 1.6±0.2% (DMA10%) sin observarse diferencia estadística entre estos valores (p>0.05). Los resultados del presente estudio permiten concluir que DMSO incluido a 5 o 10%, registró mejor calidad del semen descongelado al compararlo con los obtenidos con DMA y EG; sin embargo, la capacidad fecundante del semen criopreservado con esta solución crioprotectora (DMSO 5 o 10%, yema de huevo 12% y glucosa 6%) debe ser evaluada mediante pruebas de fertilidad y eclosión. | spa |
dc.description.degreelevel | Maestría | spa |
dc.description.degreename | Magíster en Ciencias Ambientales | spa |
dc.description.modality | Trabajos de Investigación y/o Extensión | spa |
dc.description.tableofcontents | 1. INTRODUCCIÓN 14 | spa |
dc.description.tableofcontents | 2. OBJETIVOS 17 | spa |
dc.description.tableofcontents | 2.1. OBJETIVO GENERAL 17 | spa |
dc.description.tableofcontents | 2.2. OBJETIVO ESPECÍFICO 17 | spa |
dc.description.tableofcontents | 3. HIPÓTESIS 18 | spa |
dc.description.tableofcontents | 3.1. HIPÓTESIS NULA (H0) 18 | spa |
dc.description.tableofcontents | 3.2. HIPÓTESIS ALTERNATIVA (H1) 18 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4. MARCO TEÓRICO 19 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4.1. BIOECOLOGÍA DE DORADA Brycon sinuensis 19 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4.2. CRIOCONSERVACIÓN DE SEMEN DE PECES 20 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4.2.1. Crioprotectores 23 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4.3. EVALUACIÓN DE LA CALIDAD ESPERMÁTICA 24 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4.3.1. Movilidad espermática 25 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4.3.2. Daño en membrana espermática y mitocondrias 26 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4.3.3. Fragmentación del DNA 27 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4.3.3. Fragmentación del DNA 27 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5. METODOLOGÍA 28 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.1. LOCALIZACIÓN Y DESCRIPCIÓN DEL ÁREA DEL ESTUDIO 28 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.2. MATERIAL BIOLÓGICO 28 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.3. OBTENCIÓN DEL SEMEN Y EVALUACIÓN SEMINAL 29 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.4. TRATAMIENTOS 29 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.5. CRIOPRESERVACIÓN DEL SEMEN 30 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.5.1. Empacado y congelación 30 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.5.2. Descongelación del semen 31 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.6. CALIDAD SEMINAL 31 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.6.1. Volumen seminal 31 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.6.2. Concentración espermática 31 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.6.3. Tiempo de activación 32 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.6.4. Movilidad total, tipos de movilidad, velocidades y progresividad espermática 32 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.7. EVALUACIÓN DE DAÑOS POR CITOMETRÍA DE FLUJO 32 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.7.1. Daño en la membrana espermática y mitocondrias 32 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.7.2. Fragmentación del DNA 33 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.8. DISEÑO EXPERIMENTAL Y ANALISIS ESTADÍSTICO 34 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6. RESULTADOS 35 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6.1. CARACTERÍSTICAS DEL SEMEN DE DORADA 35 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6.2. CALIDAD DEL SEMEN PRECONGELADO 35 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6.3. CALIDAD DEL SEMEN DESCONGELADO 37 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6.4. DAÑO CELULAR EN SEMEN DESCONGELADO 39 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6.4.1. Daño en mitocondrias 39 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6.4.2. Daño en membrana espermática 40 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6.4.3. Fragmentación del DNA 40 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6.5. EFECTO DE FACTORES EVALUADOS Y SU INTERACCIÓN 41 | spa |
dc.description.tableofcontents | 7. DISCUSIÓN 43 | spa |
dc.description.tableofcontents | 8. CONCLUSIONES 53 | spa |
dc.description.tableofcontents | 9. BIBLIOGRAFÍA 54 | spa |
dc.format.mimetype | application/pdf | spa |
dc.identifier.uri | https://repositorio.unicordoba.edu.co/handle/ucordoba/4456 | |
dc.language.iso | spa | spa |
dc.publisher | Universidad de Córdoba | spa |
dc.publisher.faculty | Facultad de Educación y Ciencias Humanas | spa |
dc.publisher.place | Montería, Córdoba, Colombia | spa |
dc.publisher.program | Maestría en Ciencias Ambientales | spa |
dc.rights | Copyright Universidad de Córdoba, 2021 | spa |
dc.rights.accessrights | info:eu-repo/semantics/restrictedAccess | spa |
dc.rights.creativecommons | Atribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0 Internacional (CC BY-NC-ND 4.0) | spa |
dc.rights.uri | https://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/ | spa |
dc.subject.keywords | Dimethylacetamide | spa |
dc.subject.keywords | Dimethylsulfoxide | eng |
dc.subject.keywords | Ethyleneglycol | eng |
dc.subject.keywords | Reophilic fish | eng |
dc.subject.keywords | Reproduction | eng |
dc.subject.proposal | Dimetilacetamida | spa |
dc.subject.proposal | Dimetilsulfóxido | spa |
dc.subject.proposal | Dimetilsulfóxido | spa |
dc.subject.proposal | Etilenglicol | spa |
dc.subject.proposal | Peces reofílicos | spa |
dc.subject.proposal | Reproducción | spa |
dc.title | Crioconservación de semen de dorada Brycon sinuensis con diferentes crioprotectores a dos porcentajes de inclusión | spa |
dc.type | Trabajo de grado - Maestría | spa |
dc.type.coar | http://purl.org/coar/resource_type/c_bdcc | spa |
dc.type.content | Text | spa |
dc.type.driver | info:eu-repo/semantics/masterThesis | spa |
dc.type.redcol | https://purl.org/redcol/resource_type/TM | spa |
dc.type.version | info:eu-repo/semantics/submittedVersion | spa |
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