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Evaluación in vitro de la actividad antifúngica del extracto de vismia baccifera (L.) frente al dermatofito Nannizzia gypsea

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dc.contributor.advisorArias Ríos, Jorge Enrique
dc.contributor.advisorBetin Ruiz , Andrés José
dc.contributor.authorArgumedo Montes, Carolina
dc.contributor.juryOviedo Zumaque, Luis Eliecer
dc.contributor.juryNegrete Peñata, Jorge Luis
dc.contributor.refereeOviedo Zumaque, Luis Eliecer
dc.contributor.refereeNegrete Peñata, Jorge Luis
dc.date.accessioned2025-07-25T20:17:57Z
dc.date.available2026-07-24
dc.date.available2025-07-25T20:17:57Z
dc.date.issued2025-07-24
dc.description.abstractLa dermatofitosis, conocida comúnmente como tiña, es una de las infecciones cutáneas más prevalentes y recurrentes a nivel mundial. Esta micosis superficial es causada por hongos queratinolíticos de los géneros Trichophyton, Microsporum, Epidermophyton, Arthroderma, Paraphyton, Lophophyton y Nannizzia, los cuales invaden tejidos ricos en queratina como piel, cabello y uñas. El objetivo de este estudio fue evaluar in vitro la actividad antifúngica del extracto etanólico de Vismia baccifera (L.) frente al dermatofito Nannizzia gypsea. La cepa fue caracterizada fenotípica y genotípicamente mediante análisis morfológicos, PCR de la región ITS y análisis filogenético con BLAST y MEGA11. El extracto vegetal se obtuvo por maceración con etanol al 96 % y se analizó por cromatografía de gases acoplada a espectrometría de masas (GC-MS). La actividad antifúngica se evaluó mediante los métodos de difusión en placa e inhibición por diluciones seriadas dobles, utilizando clotrimazol como control positivo. La secuenciación de la región ITS confirmó la identidad de la cepa como N. gypsea. Las zonas de inhibición registradas para las concentraciones de 250, 500 y 750 mg L⁻¹ del extracto oscilaron entre 12,63 ± 0,41 mm y 13,17 ± 0,38 mm. La concentración mínima inhibitoria (CMI) fue de 156,25 µg mL⁻¹. Los resultados indican que el extracto etanólico de Vismia baccifera presenta actividad antifúngica in vitro frente a N. gypsea, lo que sugiere su potencial como fuente de compuestos bioactivos con aplicación en el tratamiento de dermatofitosis.
dc.description.abstractDermatophytosis, commonly known as ringworm, is one of the most prevalent and recurrent skin infections worldwide. This superficial mycosis is caused by keratinolytic fungi from the genera Trichophyton, Microsporum, Epidermophyton, Arthroderma, Paraphyton, Lophophyton, and Nannizzia, which invade keratinized tissues such as skin, hair, and nails. The objective of this study was to evaluate the in vitro antifungal activity of the ethanolic extract of Vismia baccifera (L.) against the dermatophyte Nannizzia gypsea. The fungal strain was phenotypically and genotypically characterized through morphological analyses, PCR amplification of the ITS region, and phylogenetic analysis using BLAST and MEGA11. The plant extract was obtained by maceration in 96% ethanol and analyzed by gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS). Antifungal activity was assessed using agar diffusion and broth microdilution methods, with clotrimazole as the positive control. Sequencing of the ITS region confirmed the identity of the strain as N. gypsea. Inhibition zones observed for concentrations of 250, 500 and 750 mg L⁻¹ of the extract ranged from 12.63 ± 0.41 mm to 13.17 ± 0.38 mm. The minimum inhibitory concentration (MIC) was 156.25 µg mL⁻¹. These results indicate that the ethanolic extract of Vismia baccifera exhibits in vitro antifungal activity against N. gypsea, suggesting its potential as a source of bioactive compounds for the treatment of dermatophytosis.eng
dc.description.degreelevelMaestría
dc.description.degreenameMagíster en Biotecnología
dc.description.modalityTrabajos de Investigación y/o Extensión
dc.description.tableofcontentsIntroducción
dc.description.tableofcontents1. Introducción 13
dc.description.tableofcontents2. Objetivos 15
dc.description.tableofcontents2.1. Objetivo General 15
dc.description.tableofcontents2.2. Objetivos Específicos 15
dc.description.tableofcontents3. Marco Teórico 16
dc.description.tableofcontents3.1. Hongos Dermatofitos 16
dc.description.tableofcontents3.2. Dermatofitosis 17
dc.description.tableofcontents3.2.1. Patogenia y defensa del huésped 17
dc.description.tableofcontents3.2.2. Tratamiento de la dermatofitosis 18
dc.description.tableofcontents3.3. Vismia baccifera L. 20
dc.description.tableofcontents3.3.1. Distribución geográfica del género Vismia 20
dc.description.tableofcontents3.3.2. Extractos del género Vismia con actividad antimicrobiana 20
dc.description.tableofcontents4. Metodología 23
dc.description.tableofcontents4.1. Tipo de estudio 23
dc.description.tableofcontents4.2. Área de estudio 23
dc.description.tableofcontents4.3. Caracterización fenotípica y genotípica de una cepa de Nannizzia gypsea mediante análisis morfológicos y técnicas moleculares 23
dc.description.tableofcontents4.3.1. Caracterización fenotípica 23
dc.description.tableofcontents4.3.2. Caracterización genotípica 24
dc.description.tableofcontents4.4. Evaluación de la composición fitoquímica del extracto de Vismia baccifera (L.) a través de cromatografía de gases acoplado a espectrometría de masas (GC-MS) 25
dc.description.tableofcontents4.4.1. Recolección del material vegetal 25
dc.description.tableofcontents4.4.2. Preparación del extracto por maceración con etanol 26
dc.description.tableofcontents4.4.3. Análisis fitoquímico del extracto a través de cromatografía de gases-espectrometría de masas (GC-MS) 26
dc.description.tableofcontents4.5. Determinación de la actividad antifúngica in vitro del extracto de Vismia baccifera (L.) por el método de difusión en placa y diluciones seriadas dobles 27 4.5.1. Actividad antifúngica in vitro mediante el método de difusión en placa 27 4.5.2. Concentración mínima inhibitoria (CMI) in vitro del extracto de Vismia baccifera (L.) por el método de diluciones seriadas dobles 28
dc.description.tableofcontents4.6. Análisis estadístico 29
dc.description.tableofcontents5. Resultados 30
dc.description.tableofcontents5.1. Caracterización fenotípica y genotípica de una cepa de Nannizzia gypsea mediante análisis morfológicos y técnicas moleculares 30
dc.description.tableofcontents5.1.1. Identificación molecular 31
dc.description.tableofcontents5.2. Evaluación de la composición fitoquímica del extracto de Vismia baccifera (L.) a través de cromatografía de gases acoplado a espectrometría de masas (GC-MS) 31
dc.description.tableofcontents5.3. Determinación de la actividad antifúngica in vitro del extracto de Vismia baccifera (L.) por el método de difusión en placa y diluciones seriadas dobles 34
dc.description.tableofcontents5.3.1. Actividad antifúngica in vitro mediante el método de difusión en placa 34
dc.description.tableofcontents5.3.2. Concentración mínima inhibitoria (CMI) in vitro del extracto de Vismia baccifera (L.) por el método de diluciones seriadas 37
dc.description.tableofcontents6. Discusión 39
dc.description.tableofcontents7. Conclusiones 44
dc.description.tableofcontents8. Recomendaciones 45
dc.description.tableofcontents9. Referencias Bibliográficas 46
dc.description.tableofcontents10. ANEXOS 56
dc.description.tableofcontentsTabla 1. Identificación y cuantificación por GC-MS de los componentes del extracto de V. baccifera (componentes con ω > 0,04%, masa, n = 3, p = 0,95). 29
dc.description.tableofcontentsTabla 2. Actividad antifúngica del extracto de V. baccifera frente al dermatofito Nannizzia gypsea cuando se utiliza el método de difusión en placa. 32
dc.description.tableofcontentsFigura 1. Características macromorfológicas (A) y micromorfológicas (B) de Nannizzia gypsea. 28
dc.description.tableofcontentsFigura 2. Árbol filogenético construido mediante el test de máxima verisimilitud del aislamiento fúngico y secuencias homólogas disponibles en la base de datos GenBank obtenidos mediante el algoritmo NCBI BLAST. 29
dc.description.tableofcontentsFigura 3. Aspecto del campo de la placa petri después de 168 h de inoculación de cultivos de Nannizzia gypsea cuando se expusieron al extracto de V. baccifera a diferentes concentraciones: (A) 250 mg L-1; (B) 500 mg L-1; (C) 750 mg L-1 y (D) control. 34
dc.description.tableofcontentsFigura 4. Actividad antifúngica (CMI) del extracto etanolico de las hojas de V. baccifera contra Nannizzia gypsea. 35
dc.description.tableofcontentsFigura 5. Actividad antifúngica de los controles: DMSO (A) y clotrimazol al 1% (B) contra Nannizzia gypsea. 36
dc.format.mimetypeapplication/pdf
dc.identifier.instnameUniversidad de Córdoba
dc.identifier.reponameRepositorio Universidad de Córdoba
dc.identifier.repourlhttps://repositorio.unicordoba.edu.co/
dc.identifier.urihttps://repositorio.unicordoba.edu.co/handle/ucordoba/9489
dc.language.isospa
dc.publisherUniversidad de Córdoba
dc.publisher.facultyFacultad de Ciencias Básicas
dc.publisher.placeMontería, Córdoba, Colombia
dc.publisher.programMaestría en Biotecnología
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dc.rights.urihttps://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/
dc.subject.keywordsDermatophytosiseng
dc.subject.keywordsMinimuminhibitory concentrationeng
dc.subject.keywordsRingwormeng
dc.subject.proposalDermatofitosisspa
dc.subject.proposalConcentración mínima inhibitoriaspa
dc.subject.proposalTiñaspa
dc.titleEvaluación in vitro de la actividad antifúngica del extracto de vismia baccifera (L.) frente al dermatofito Nannizzia gypsea
dc.typeTrabajo de grado - Maestría
dc.type.coarhttp://purl.org/coar/resource_type/c_bdcc
dc.type.coarversionhttp://purl.org/coar/version/c_ab4af688f83e57aa
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