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Crioconservación de semen de bagre rayado Pseudoplatystoma magdaleniatum con dos crioprotectores internos (metanol y dimetilsulfóxido) y dos externos (leche en polvo descremada y yema de huevo)

dc.contributor.advisorAtencio Garcia, Víctor
dc.contributor.advisorMontes Petro, César David
dc.contributor.authorRodríguez Peroza, Betty Gregoria
dc.contributor.juryPARDO-CARRASCO, SANDRA CLEMENCIA
dc.contributor.juryMartínez, José Gregorio
dc.date.accessioned2025-05-31T18:27:57Z
dc.date.available2025-05-31T18:27:57Z
dc.date.issued2025-05-31
dc.description.abstractBagre rayado Pseudoplatystoma magdaleniatum, es una especie categorizada en peligro crítico de extinción, como consecuencia de la drástica reducción de sus volúmenes de captura ocasionada por la degradación de sus hábitats y la sobrepesca. La criopreservación de semen es una tecnología importante para la conservación de especies amenazadas o en peligro de extinciónspa
dc.description.abstractThe catfish Pseudoplatystoma magdaleniatum is a species categorized as critically endangered due to the drastic reduction in its capture volumes caused by the degradation of its habitats and overfishing. Semen cryopreservation is an important tool for conserving threatened or endangered species. Teng
dc.description.degreelevelMaestría
dc.description.degreenameMagíster en Ciencias Veterinarias del Trópico
dc.description.modalityTrabajos de Investigación y/o Extensión
dc.description.tableofcontentsINTRODUCCIÓN 11spa
dc.description.tableofcontentsJUSTIFICACIÓN 13spa
dc.description.tableofcontentsOBJETIVOS GENERAL 14spa
dc.description.tableofcontentsOBJETIVOS ESPECIFICOS 14spa
dc.description.tableofcontentsCAPITULO 1 15spa
dc.description.tableofcontentsMARCO TEÓRICO 15spa
dc.description.tableofcontentsGENERALIDADES DE LOS ESPERMATOZOIDES EN PECES 15spa
dc.description.tableofcontentsCRIOCONSERVACIÓN 16spa
dc.description.tableofcontentsDILUYENTES Y CRIOPROTECTORES 18spa
dc.description.tableofcontentsOSMOLARIDAD 22spa
dc.description.tableofcontentsCONGELACION Y DESCONGELACION 22spa
dc.description.tableofcontentsVOLUMEN DE EMPACADO DEL SEMEN 23spa
dc.description.tableofcontentsCRIOCONSERVACION DE SEMEN DE PECES EN COLOMBIA 24spa
dc.description.tableofcontentsCAPITULO 2 26spa
dc.description.tableofcontentsCRIOCONSERVACIÓN DE SEMEN DE BAGRE RAYADO Pseudoplatystoma magdaleniatum CON DOS CRIOPROTECTORES INTERNOS (METANOL Y DIMETILSULFÓXIDO) Y DOS EXTERNOS (LECHE EN POLVO DESCREMADA Y YEMA DE HUEVO) 26spa
dc.description.tableofcontentsRESUMEN 26spa
dc.description.tableofcontentsABSTRACT 27spa
dc.description.tableofcontentsINTRODUCCIÓN 28spa
dc.description.tableofcontentsMÉTODOS Y MATERIALES 29spa
dc.description.tableofcontentsMaterial biológico 29spa
dc.description.tableofcontentsObtención de productos sexuales 30spa
dc.description.tableofcontentsTratamientos y diseño experimental 30spa
dc.description.tableofcontentsEmpacado, congelación y descongelación 31spa
dc.description.tableofcontentsCalidad seminal 31spa
dc.description.tableofcontentsCapacidad fecundante del semen criopreservado/descongelado 32spa
dc.description.tableofcontentsCalidad del agua en el sistema de incubación 32spa
dc.description.tableofcontentsAnálisis estadístico 33spa
dc.description.tableofcontentsRESULTADOS 34spa
dc.description.tableofcontentsCalidad del semen precongelado y descongelado 34spa
dc.description.tableofcontentsFertilidad y eclosión 37spa
dc.description.tableofcontentsDISCUSIÓN 40spa
dc.description.tableofcontentsCONCLUSIÓN 44spa
dc.description.tableofcontentsBIBLIOGRAFÍA 44spa
dc.description.tableofcontentsANEXOS 54spa
dc.format.mimetypeapplication/pdf
dc.identifier.instnameUniversidad de Córdoba
dc.identifier.reponameRepositorio Universidad de Córdoba
dc.identifier.repourlhttps://repositorio.unicordoba.edu.co/
dc.identifier.urihttps://repositorio.unicordoba.edu.co/handle/ucordoba/9170
dc.language.isospa
dc.publisherUniversidad de Córdoba
dc.publisher.facultyFacultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia
dc.publisher.placeBerástegui, Córdoba, Colombia
dc.publisher.programMaestría en Ciencias Veterinarias del Trópico
dc.relation.referencesAlves, J., Corcini, C., Silva, E., Caldas, J., Cardoso, T., Piedras, S., Jardim, R., and Varela, A. (2016). The role of amides in seminal cryopreservation of wild silverside, Odontesthes bonariensis. Cryobiology, 73(3):383-387. DOI: 10.1016/j.cryobiol.2016.09.001.
dc.relation.referencesArciniegas, S. P., Rodríguez, J. M., y Casallas, P. C. (2005). Ensayos preliminares sobre crioconservación de semen de bagre rayado (Pseudoplatystoma fasciatum Linnaeus, 1766). Orinoquía, 9(2): 28-37.
dc.relation.referencesAsturiano, J., Sorensen, S., Perez, L., Lauesen, P., and Tomkiewicz, J. (2016). First production of larvae using cryopreserved sperm: Effects of preservation temperature and cryopreservation on European eel sperm fertilization capacity.
dc.relation.referencesAtencio-García, V., Cabrales-Hessen, S., and Espinosa-Araujo, José. (2021). Effect of ethylene glycol and milk powder in the cryopreservation of bocachico semen Prochilodus magdalenae. Rev. colomb. Biotecnol, 23(2): 25-35. DOI: 10.15446/rev.colomb.biote.v23n2.91188.
dc.relation.referencesAtencio-García, V., Dorado-Longas, M., Montes-Petro, C., Prieto-Guevara, M., y Espinosa-Araujo J. (2017). Cryopreservation of dorada (Brycon moorei) sperm with dimethyl sulfoxide. Rev. colomb. Biotecnol, 19(2):87-94. DOI:10.15446/rev.colomb. biote.v19n2.59987.
dc.relation.referencesAtencio-García, V., Espinosa-Araujo, J., Martínez, J., and Pardo-Carrasco, S. (2015). Insemination of bocachico fish (Prochilodus magdalenae) with fresh or cryopreserved semen: effect of spermatozoa/oocyte ratio. RCPP, 28:347-355.
dc.relation.referencesAtencio-García, V., Padilla-Izquierdo, D., Robles-González, J., Prieto-Guevara, M., Pardo-Carrasco, S., and Espinosa-Araujo J. (2023). Damage to Sorubim cuspicaudus Sperm Cryopreserved with Ethylene Glycol. Animals, 13:235. DOI: 10.3390/ani13020235.
dc.relation.referencesÁvila-Portillo, L., Madero, J., López, C., León, M., Acosta, L., Gómez, C., Delgado, L., Gómez, C., Lozano, J., y Reguero, M. (2006). Fundamentos de criopreservación. Rev Colomb Obstet Ginecol, 57 (4).
dc.relation.referencesBalamurugan, R., and Munuswamy, N. (2017). Crioconservación de esperma en salmonete gris Mugil cephalus (Linnaeus, 1758). Anim Reprod Sci, 185: 205-213. DOI:10.1016/j.anireprosci.2017.08.022.
dc.relation.referencesBart, A., Wolfe, D., y Dunham, R. (1998). Criopreservación de espermatozoides de bagre azul y posterior fertilización de huevos de bagre de canal. Trans Am Fish Soc, 127:819- 824.
dc.relation.referencesBernáth, G., Bokor, Z., Zarski, D., Várkonyi, L., Hegyi, A., Staszny, A., Urbányi, B., Radóczi, J., and Horváth, A. (2016). Commercial-scale out-of-season cryopreservation of Eurasian perch (Perca fluviatilis) sperm and its application for fertilization. Animal Reproduction Science, 170: 170-177.
dc.relation.referencesBernáth, G., Csorbai, B., Nagy, B., Csókás, E., Molnár, J., Bartucz, T., Láng, Z., Gyurcsák, M., Hegyi, Á., Kobolák, J., Griffitts, J., Ferincz, Á., Urbányi, B., and Bokor, Z. (2023). The investigation of post-thaw chilled storage and the applicability of large-scale cryopreservation in chub (Squalius cephalus) sperm. Cryobiology, 113:1-9. DOI: 10.1016/j.cryobiol.2023.104588,
dc.relation.referencesBillard, R., Linhart, O., Fierville, F., and Cosson, J. (1997). Motility of European catfish Silurus glanis spermatozoa in testes and milt. Polskie Archiwum Hidrobiology 44:115-122.
dc.relation.referencesBorges, A., Araújo, K., Pivato, I., and Navarro, R. (2020). Ultraestrutura e criopreservação de sêmen de jundiá amazônico (Leiarius marmoratus) em cativeiro. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, 72 (1): 253-262.
dc.relation.referencesBuitrago-Suárez, A., and Burr, B. (2007). Taxonomy of the catfish genus Pseudoplatystoma Bleeker (Siluriformes: Pimelodidae) With Recognition of Eight Species. Zootaxa, 1512: 1-38.
dc.relation.referencesCabrita, E., Martínez-Páramo, S., Gavaia, P., Riesco, M., Valcarce, D., Sarasquete, C., Herráez, M., and Robles, V. (2014). Factors enhancing fish sperm quality and emerging tools for sperm analysis. Aquaculture, 432:389- 401. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2014.04.034.
dc.relation.referencesCabrita, E., Sarasquete, C., Martínez-Páramo, S., Robles, V., Beirão, J., Pérez-Cerezales, S., and Herráez, M. (2010). Cryopreservation of fish sperm: applications and perspectives. Journal of Applied Ichthyology, 26:623 – 635. DOI: 1 0.1111/j1439-0426.2010.01556.
dc.relation.referencesCarmona-Calderón, J., Espinosa-Araújo, J., Atencio-García, V., y Díaz-Hernández, O. (2021). Crioconservación de semen de dorada (Brycon sinuensis) con diferentes crioprotectores a dos porcentajes de inclusión. Orinoquia, 25(2): 15-24. DOI: 10.22579/20112629.
dc.relation.referencesCarneiro, P., Azevedo, Hymerson, C., Santos, Jadson, P., and Alexandre, M. (2012). Cryopreservation of tambaqui (Colossoma macropomum) semen: Extenders, cryoprotectants, dilution ratios and freezing methods. CryoLetters, 33(5):385–393
dc.relation.referencesCarolsfeld, J., Godinho, H., Zaniboni-Filho, E., Harvey, B. (2003). Criopreservación de esperma en peces migratorios brasileños Conservación. Revista de biología de peces, 63:472-489.
dc.relation.referencesCiereszko, A., Dietrich, M., and Nynca. J. (2017). Fish semen proteomics - New opportunities in fish reproductive research. Aquaculture, 472:81-92.
dc.relation.referencesCosson, J., Billard, R., Cibert, C., y Dréanno, C. (1999). Factores iónicos que regulan la motilidad del esperma de pescado. En: Gagnon C, editor. El Gameto Masculino: del conocimiento básico a las aplicaciones clínicas. Viena: Cache river press. págs. 161-186.
dc.relation.referencesCruz-Casallas, P. E., Medina-Robles, V. M., y Velasco-Santamaría, Y. M. (2006). Protocol for cryopreservation of yamú: Brycon amazonicus. Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias, 19(2), 146-151.
dc.relation.referencesCruz-Casallas, P., Lombo-Rodriguez, D., and Velasco-Santamaria, Y. (2005). Milt quality and spermato-zoa morphology of captive Brycon siebenthalae (Eigenmann) broodstock. Aquac Res, 36, 682-686.
dc.relation.referencesCruz-Casallas, P., Medina-Robles, V., y Velasco-Santamaria, Y. (2006). Evaluación de diferentes crioprotectores para la crioconservación de espermatozoides de yamú (Brycon amazonicus) Rev Colom Cienc Pecua, 19(2):152-159
dc.relation.referencesCruz-Casallas, P., Pardo-Carrasco, S., Arias-Castellanos, J., Lombo-Castellanos, P., Lombo-Rodríguez, D., and Pardo-Mariño, J. (2004). Cryopreservation of yamú Brycon siebenthalae Milt. J World Aquacult Soc, 35(4), 529-535.
dc.relation.referencesDa Costa, B., Lassen, P., and Streit, P. (2024). Cryopreservation-Induced Morphological Changes in Freshwater Fish Sperm: A Systematic Review. Biopreserv Biobank, DOI: 10.1089/bio.2023.0008.
dc.relation.referencesDe Leeuw, F, de Leeuw A., Den Dass, J., Coenbranden, B., and Verkleij, A. (1993). Effects of various cryoprotective agents and membrane-stabilizing compounds on bull sperm membrane integrity after cooling and freezing. Cryobiology, 30:32-44.
dc.relation.referencesDennniston, R., Michelet, S., Bondioli, KR and Godke, RA (2011). Principios de la criopreservación de embriones. Criopreservación en especies acuáticas. 2ª ed. Sociedad Mundial de Acuicultura, Baton Rouge, Loussiana, USA, 274-290.
dc.relation.referencesDietrich, M., Arnold, J., Fröhlich, T., Otte, K., Dietrich, G., and Ciereszko, A. (2015). Proteomic analysis of extracellular medium of cryopreserved carp (Cyprinus carpio L.) semen. Comparative Biochemistry and Physiology Part D: Genomics and
dc.relation.referencesDiwan, A.. Ayyappan, S., Lakra, W. (2010). Cryopreservation of fish gametes and embryos. The Indian Journal of Animal Sciences, 80(4):109–124.
dc.relation.referencesDuarte, L., E. García, K., Tejeda, F., Cuello, B., Gil-Manrique, G., De León, J., Curiel, C., Cuervo, O., Vargas, E., Isaza, L., Manjarrés–Martínez, y Reyes-Ardila. (2022). Estadísticas de desembarco y esfuerzo de las pesquerías artesanales de Colombia – Enero a octubre de 2022. Autoridad Nacional de Acuicultura y Pesca (AUNAP), Universidad del Magdalena, Santa Marta, 136.
dc.relation.referencesDumorné, K., Figueroa, E., Cosson, J., Lee-Estevez, M., Ulloa-Rodríguez, P., Valdebenito, I., and Farías, J. (2017). Protein phosphorylation and ions effects on salmonid spermmotility activation. Rev. Aquaculture, 1 - 11.
dc.relation.referencesDzyuba, V., and Cosson, J. (2014). Motility of fish spermatozoa: from external signaling to flagella response. Reprod Biol, 14(3):165-75. DOI: 10.1016/j.repbio.2013.12.005.
dc.relation.referencesEl Kamouh, M., Brionne, A., Sayyari, A., Laurent, A., and Labbé, C. (2023). Cryopreservation effect on DNA methylation profile in rainbow trout spermatozoa. Sci Rep, 3;13(1):1-20. DOI: 10.1038/s41598-023-44803-2.
dc.relation.referencesEspinosa, A. (2013). Estandarización de un protocolo para la crioconservación de semen de bagre blanco Sorubim cuspicaudus. [Tesis de Maestría], Facultad de Ciencias Básicas e Ingeniería, Maestría en Biotecnología. Montería, Colombia: Universidad de Córdoba, 82p
dc.relation.referencesFAO. 1988. Aspectos de las políticas, programas, presupuesto y actividades de la FAO encaminados a contribuir a un desarrollo viable. Documento para el 94.º periodo de sesiones del Consejo de la FAO, Roma, 15-25 de noviembre. CL 94/6.
dc.relation.referencesFarley, J., Ostermeier, C., TAFT, Robert., Wiles, M. (2012). Sperm cryoprotective media. AU203918 A1. Melbourne (Australia).
dc.relation.referencesFigueroa, E., Merino, O., Risopatrón, J., Isachenko, V., Sánchez, R., Effer, B., Isachenko, E., Farias, J., and Valdevenito, I. (2015). Effect of seminal plasma on Atlantic salmon (Salmo salar) sperm vitrification. Theriogenology, 83: 238-245. DOI: 10.1016/j.theriogenology.2014.09.015.
dc.relation.referencesFigueroa, E., Valdebenito, I., Zepeda, A., Figueroa, C., Dumorné, K., Castillo, R., and Farias, J. (2017). Effects of cryopreservation on mitochondria of fish spermatozoa. Reviews in Aquaculture, 9:76-87. DOI: 10.1111/raq.12105.
dc.relation.referencesFrança, T., Motta, N., Egger, R., Oliveira, A., and Murgas, L. (2020). Impact of activation solutions on fresh and frozen-thawed sperm motility and fertilization success for two species of migratory freshwater fishes. Theriogenology, 149: 6-15. DOI: 10.1016/j.theriogenology.2020.03.016 22.
dc.relation.referencesFu, S., Jiang, J., Yang, W., and Zhu, J. (2016). A histological study of testis development and ultrastructural features of spermatogenesis in cultured Acrossocheilus fasciatus. Tissue Cell, 48(1):49-62. DOI: 10.1016/j.tice.2015.10.005.
dc.relation.referencesGalo, M., Streit-Junior, D., Oliveira, C. (2019). Quality of fresh and cryopreserved semen and their influence on the rates of fertilization, hatching and quality of the larvae of Piaractus mesopotamicus. Brazilian J Biol, 9(3):438- 445.
dc.relation.referencesGarcía-Alzate, C., DoNascimiento, C., Villa-Navarro, F., García-Melo, J. y Herrera-R., G. (2020). Diversidad de peces de la cuenca del río Magdalena, Colombia. En: Jiménez-Segura, L. & C. A. Lasso (Eds.). XIX. Peces de la cuenca del río Magdalena, Colombia: diversidad, conservación y uso sostenible. Pp: 85-113. Serie Editorial Recursos Hidrobiológicos y Pesqueros Continentales de Colombia. Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt. Bogotá, D. C., Colombia. DOI: 10.21068/B2020RRHHXIX02
dc.relation.referencesGiora, J., and Burns, R. (2011). Sperm ultrastructure in three different families of weakly electric fishes (Teleostei: Gymnotiformes). Neotropical Ichthyology, 9(4): 881-888
dc.relation.referencesGonçalves, L., Silva, G., Viana, I., Hainfellner, P., Ferreira, M., Batlouni, S., and Rocha, R. (2019). Testicular structure and development of germ cells of Hypophthalmus marginatus Valenciennes 1840 (Siluriformes: Pimelodidae). Anim Reprod Sci, 211:1-12. DOI: 10.1016/j.anireprosci.2019.106223.
dc.relation.referencesGonzález-Porto, J. (2018). Pesquerias artesanales de Colombia: Valor monetario de los desembarcos, ingresos y renta económica (período julio-diciembre 2018). Bogotá: Autoridad nacional de Acuicultura y pesca AUNAP.
dc.relation.referencesGrassiotto, Q., Negräu, J., Carvalho, E., Foresti, F. (2001). Ultraestructura de células espermatogénicas y espermatozoides en Hoplias malabaricus (Teleostei, Characiformes, Erythrinidae). J. Biología de peces, 59: 1494-1502.
dc.relation.referencesHerrera, F., Bondarenko, O., and Boryshpolets, S. (2021). Osmoregulation in fish sperm. Fish Physiol Biochem, 47(3):785-795. doi: 10.1007/s10695-021-00958-1.
dc.relation.referencesHerrera-Cruz, E., Aristizabal-Regino, J., Yepes-Blandón, J, Estrada-Posada, A., Espinosa-Araujo, J., y Atencio-García, V. (2019). Criopreservación de semen de bagre rayado Pseudoplatystoma magdaleniatum con tres diferentes crioprotectores. Revista Colombiana de Biotecnología, 21(2):55–62.
dc.relation.referencesIslam, M., and Akhter, T. (2011). Tale of fish sperm and factors affecting sperm motility: A Review. Adv. Life Sci, 1: 11-19. DOI:10.5923/j. als.20110101.03.
dc.relation.referencesJiménez-Segura, L., Palacio, J., y López, R. (2009). Características biológicas del Blanquillo Sorubim cuspicaudus Littmann, Burr y Nass, 2000 y Bagre Rayado Pseudoplatystoma magdaleniatum. Buitrago-Suárez & Burr 2007. (Siluriformes: Pimelodidae) relacionadas con su reproducción en la cuenca media del río Magdalena, Colombia. Actual Biol, 31(90):53-66.
dc.relation.referencesJimenéz-Segura, L., y Lasso, C. (Eds.). 2020. XIX. Peces de la cuenca del río Magdalena, Colombia: diversidad, conservación y uso sostenible. Serie Editorial Recursos Hidrobiológicos y Pesqueros Continentales de Colombia. 434 pp.
dc.relation.referencesJudycka, S., Dietrich, M., Szczepkowska, B., Szczepkowski, B., Liszewska, E., and Ciereszko, A. (2024). Evaluation of the effects of glucose concentration in extender and sperm concentration in straw for cryopreservation of Atlantic sturgeon (Acipenser oxyrinchus) semen. Aquaculture report, 35: 1-7.
dc.relation.referencesKolyada, M., Osipova, V., and Berberova, N. (2023). Use of cryoprotectors and antioxidants in sturgeon semen cryopreservation. Cryobiology, 111:30-39. DOI: 10.1016/j.cryobiol.2023.02.003.
dc.relation.referencesLahnsteiner, F., y Patzner, A. (2008). Sperm morphology and ultrastructure in fish. In: H. A. S. Mohammad., J. J. Cosson, K. Coward & G. Rafiee. (Eds.). Fish spermatology. Alpha Sience, Oxford, pp. 1-61.
dc.relation.referencesLeón-Tejera, H., Montejano, G., and Cantoral-Uriza, E. (2003). Some little known Hydrococcaceae (Cyanoprokariota) from Central Mexico. Arch. Hydrobiol. / suppl. Algological Studies, 109:363-374. DOI: 10.1127/1864-1318/2003/0109-0363. Links
dc.relation.referencesMaldonado-Ocampo, J., Vari, R., and Usma, J. (2008). Checklist of the freshwater fishes of Colombia. Biota Colombiana, 9(2): 143-237.
dc.relation.referencesMaria, A., Carvalho, A., Araújo, R., Santos, J., Carneiro, P., and Azevedo, H. (2015). USe of cryotubes for the cryopreservation of tambaqui fish semen (Colossoma macropomum). Cryobiology; 70 (2): 109-114. DOI: 10.1016/j.cryobiol.2015.02.004.
dc.relation.referencesMartínez, G., Atencio-García, V, y Pardo-Carrasco, S. (2011). Efectos de la concentración de glucosa sobre la activación de la movilidad espermática en bocachico Prochilodus magdalenae (Pisces, Characiformes). Rev MVZ Córdoba, 16(2):2554-2563 32. DOI:10.21897/rmvz.1020
dc.relation.referencesMartínez, J., Atencio-García, V., and Pardo-Carrasco, S. (2012). DNA fragmentation and membrane damage of bocachico Prochilodus magdalenae (Ostariophysi, Prochilodontidae) sperm following cryopreservation with dimethylsulfoxide and glucose. Neotrop Ichthyol, 10(3):577-586. DOI:10.1590/S1679-62252012005000018
dc.relation.referencesMartínez, J., y Pardo, S. (2010). Crioconservación de semen en peces: efectos sobre la movilidad espermática y la fertilidad. Acta Biológica Colombiana,15(2):3-23. https://www.redalyc.org/pdf/3190/319027885001.pdf
dc.relation.referencesMartínez-Páramo, S., Horváth, Á., Labbé, C., Zhang, T., Robles, V., Herráez, P., Suquet, M., Adams, S., Viveiros, A, Tiersch, T., and Cabrita, E. (2017). Cryobanking of aquatic species. Aquaculture, 472: 156-177. DOI:10.1016/j.aquaculture.2016.05.042
dc.relation.referencesMedina V., Velasco Y., Cruz, P. (2005). Aspectos generales de la crioconservación espermática en peces teleósteos. Revista Colombiana Ciencias Pecuarias. 18(1):34-8.
dc.relation.referencesMedina-Robles, V., Diana, N., Guaje-Ramírez., Marin-Cossio, L., Sandoval-Vargas, L., y Cruz-Casallas, P. (2019). Crioconservación seminal de Colossoma macropomum como estrategia de producción y conservación en la Orinoquia Colombiana. Orinoquia, 23(1):15-24. DOI:10.22579/20112629.537.
dc.relation.referencesMedina-Robles, V., Duarte-Trujillo, A., y Cruz-Casallas, P. (2020). Crioconservación seminal en peces de agua dulce: aspectos biotecnológicos, celulares y bioquímicos. Orinoquia, 24(2): 51-78. DOI:10.22579/20112629.630.
dc.relation.referencesMedina-Robles, V., Velasco-Santamaría, Y., y Cruz-Casallas, P. Aspectos generales de la crioconservación espermática en peces teleósteos. Rev Colom Cienc Pec, 18(1): 34-48. DOI:10.17533/udea.rccp.323993.
dc.relation.referencesMelo-Maciel, M., Nunes, J., Pinheiro, J., Nunes, L., Pinheiro, R., Lopes, J., and Salmito-Vanderley, C. (2015). Sperm motility and velocities of Characiformes fishes in different times post-activation. Semina: Ciências Agrárias, 36(6): 4023-4030. DOI: 10.5433/1679-0359.2015v36n6p4023
dc.relation.referencesMizukami, A., Carrell, D., and Peterson, C. (1999). Cryopreservation of embryos. En: Encyclopedia of reproduction. Utah: Academic Press, 1:765-772.
dc.relation.referencesMojica, J., Usma, S., Álvarez, R., y Lasso, C. (2012). Libro rojo de peces dulceacuícolas de Colombia. La serie Libros Rojos de Especies Amenazadas de Colombia. Instituto de Ciencias Naturales. Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia/Ministerio del Medio Ambiente.
dc.relation.referencesMontes, C., y Salgado, S. (2014). Efecto de la concentración de glucosa sobre la movilidad espermática de la dorada Brycon sinuensis (Trabajo de pregrado). Departamento Ciencias Acuícolas, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad de Córdoba, Montería.
dc.relation.referencesMotta, N., Machado, G., Ferreira, I., García, J., Martínez-Chávez, C., MartıNez-Palacios, C., and Solis-Murgas, L. (2021). Sperm characterization and cryopreservation of the endangered freshwater fish Chirostoma estor (Atheriniformes). Cryobiology, 103:81-86. DOI: 10.1016/j.cryobiol.2021.09.004.
dc.relation.referencesMurgas, L., Sampaio, M., Cotta, P., Miliorini, A., Alves, E., and De Oliveira, V. (2017). Ultrastructural and Morphometric Analysis of Gametes in Neotropical Teleost Fishes. JFisheries Sciences.com, 11(1): 56-61. DOI:10.21767/1307-234X.1000109.
dc.relation.referencesMylonas, C., Duncan, N., and Asturiano, J. (2017). Hormonal manipulations for the enhancement of sperm production in cultured fish and evaluation of sperm quality. Aquaculture 472, 21–44. DOI:10.1016/j.aquaculture.2016.04.021.
dc.relation.referencesNavarro, O., Velasco Santamaría, Y., y Cruz Casallas, P. (2016). Evaluación de cinco protectores para la crioconservación de semen de Cachama Blanca (Piaractus brachypomus). Revista Colombiana De Ciencias Pecuarias, 17(4):53–59. DOI:10.17533/udea.rccp.323960.
dc.relation.referencesNeyrão, I., Santos, F., Rodrigues, R., Streit, D., and Godoy, L. (2024). Use of Powdered Milk in Semen Cryopreservation Protocols for Fish: A Systematic Review. Biopreserv Biobank, 22(1):4-20. DOI: 10.1089/bio.2022.0091.
dc.relation.referencesNomura, K., Chu, I., Lio, R., Okuda, D., Kazeto, Y., Tanaka, H., and Ohta, H. (2018). Sperm cryopreservation protocols for the large-scale fertilization of Japanese eel using a combination of large-volume straws and low sperm dilution ratio. Aquaculture, 496:203-210. DOI:10.1016/j.aquaculture.2018.07.007
dc.relation.referencesNynca, J., Arnold, G., Fröhlich, T., and Ciereszko, A. (2015) Cryopreservation induced alterations in protein composition of rainbow trout semen. Proteomics, 15:2643-2654. DOI:10.1002/pmic.201400525.
dc.relation.referencesPalhares, P., Assis, I., Machado, G., de Freitas, R., de Freitas, M., Paula, D., Carneiro, W., Motta, N., and Murgas, L. (2021). Sperm characteristics, peroxidation lipid and antioxidant enzyme activity changes in milt of Brycon orbignyanus cryopreserved with melatonin in different freezing curves. Theriogenology, 176:18-25. DOI: 10.1016/j.theriogenology.2021.09.013.
dc.relation.referencesPardo-Carrasco, S., Salas Villalva, J., Reza Gaviria, L., Espinosa Araújo, J., y Atencio-García, V. (2015). Criopreservación de semen de bagre blanco (Sorubim cuspicaudus) con dimetilacetamida como crioprotector. Rev CES Med Zootec. 10 (2): 122-131. https://revistas.ces.edu.co/index.php/mvz/article/view/3645/2453
dc.relation.referencesPereira, J., Pereira, F., Perry, C., Pires, D., Muelbert, J., Garcia, J., Corcini, C., and Varela, J. (2019). Dimethylsulfoxide, methanol and methylglycol in the seminal cryopreservation of Suruvi, Steindachneridion scriptum. Anim Reprod Sci; 200:7-13. doi: 10.1016/j.anireprosci.2018.09.024
dc.relation.referencesPineda-Santis, H., Gómez-Oquendo, J., Montoya-Páez, J., Toro-Rendón, V., Acevedo-Villa, O., y Restrepo-Betancur, G. (2015). Crioconservación de semen y calidad espermática en sabaleta Brycon henni (Pisces: Characidae). Orinoquia, 19 (2): 176-182. DOI:10.22579/20112629.316
dc.relation.referencesPinheiro, J., Melo-Maciel, M., Linhares, F., Lopes, J., Almeida-Monteiro, P., Pinheiro R., Torres, T., and Salmito-Vanderley, C. (2016). Use of glucose or BTS TM combined with DMSO or methylglycol under two different freezing protocols for the cryopreservation of sperm from the common curimatã (Prochilodus brevis). Animal Reproduction; 13 (4): 779-786. DOI:10.21451/1984-3143-AR782
dc.relation.referencesPinzón- Arciniegas, S., Mojica-Rodríguez, J., y Cruz-Casallas, P. (2005). Ensayos preliminares sobre crioconservación de semen de bagre rayado (Pseudoplatystoma fasciatum Linnaeus, 1766). Orinoquia, 9(2): 28- 37. https://www.redalyc.org/pdf/896/89690205.pdf
dc.relation.referencesRajasekharan PE. 2017. Conservation of Bioresources. En: Abdulhameed S, Pradeepy NS, Sugathan S (Editores). Bioresources and Bioprocess in Biotechnology. Springer Nature, Singapore. p. 25-47.
dc.relation.referencesRamírez- Merlano, J., Medina-Robles, V., y Cruz-Casallas, P. (2010). Crioconservación espermática en peces, un acercamiento en Siluriformes. Orinoquia, 14(1), 59-71.
dc.relation.referencesRamirez-Merlano, J., Medina-Robles, V., y Cruz-Casallas, P. (2011). Variación estacional de las características seminales del bagre rayado Pseudoplatystoma metaense (Telostei, pimelodidae). Revista MVZ Córdoba, 16(1):2336-2348. DOI:10.21897/rmvz.292 (a)
dc.relation.referencesRamírez-Merlano, J., Medina-Robles, V., y Cruz-Casallas, P. (2011). Crioconservación seminal de bagre rayado Pseudoplatystoma metaense (Teleostei,
dc.relation.referencesPimelodidae), bajo diferentes protocolos de congelación. Arch Med Vet, 43:135-144. DOI:10.4067/S0301-732X2011000200006 (b)
dc.relation.referencesRamírez-Merlano, J., Velasco-Santamaría, Y., Medina-Robles, V., y Cruz-Casallas, P. (2005). Crioconservación de semen de cachama blanca (Piaractus brachypomus Cuvier, 1818): efectos del volumen de empaque y de la sustancia crioprotector sobre la calidad seminal. Rev Colomb Cienc Pe-cu, 18(4), 331.
dc.relation.referencesSalomon, S., and Maxwell, W. (2000). Storage of ram semen. Animal Reprodution Science, 62:77-11. DOI:10.1016/s0378-4320(00)00155-
dc.relation.referencesSant’Anna, J., Moraes-Neto, A., Castro, J., Sczepanski, T., Pohv, J., Lopera-Barrero, N., and Artoni, R. (2019). Quantitative and qualitative variables of semen from surubim do Iguaçu, Steindachneridion melanodermatum Garavello, 2005 (Siluriformes: Pimelodidae). Braz. J. Biol, 79(1):1-5. DOI:10.1590/1519-6984.09016.
dc.relation.referencesShaliutina-Kolešová, A., Kotas, P., Štěrba, J., Rodina, M., Dzyuba, B., Cosson, J., and Linhart, O. (2016). Protein profile of seminal plasma and functionality of spermatozoa during the reproductive season in the common carp (Cyprinus carpio) and rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Mol Reprod Dev, 83(11):968-982. DOI: 10.1002/mrd.22737.
dc.relation.referencesShaliutina-Loginova, A., and Loginov, D. (2023). Oxidative stress y DNA fragmentation in frozen/thawed common Carp Cyprinus carpio sperm with and without supplemental proteins. Anim Reprod Sci, 251:107213. DOI: 10.1016/j.anireprosci.2023.107213.
dc.relation.referencesShimoda, E., Andrade, D., Vidal-Júnior, M., Godinho, H., and Yasui, G. (2007). Determinação da razão ótima de espermatozóides por ovócitos de piabanha Brycon insignis (Pisces - Characidae). Arq Bras Med Vet Zootec; 59:877-882. DOI:10.1590/S0102-09352007000400009
dc.relation.referencesSuquet, M., Dreanno, C., Fauvel, C., Cosson, J., y Billard, R. (2000). Criopreservación de esperma en peces marinos. Investigación en Acuicultura, 31:231–243.
dc.relation.referencesTorres, T., Almeida-Monteiro, P., Nascimento, R., Pereira, V., Ferreira, Y., Lobato, J., Pinheiro, R., Sales, Y., Montenegro, A., and Salmito-Vanderley, C. (2022). Sperm cryopreservation of Prochilodus brevis using different concentrations of non-permeable cryoprotectants. Anim Reprod, 19(1): 1-12. DOI:10.1590/1984-3143-AR2021-0083.
dc.relation.referencesTorres, T., de Almeida-Monteiro, P., do Nascimento, R., Cândido-Sobrinho, S., Sousa, C., Ferreira, Y., de Paula, K., and Salmito-Vanderley, C. (2024). Effects of taurine, cysteine and melatonin as antioxidant supplements to the freezing medium of Prochilodus brevis sperm. Cryobiology, 104858. DOI:10.1016/j.cryobiol.2024.104858.
dc.relation.referencesValderrama, M., and Zárate, M. (1989). Some ecological aspects and present state of the fishery of the Magdalena River Basin, South America. In: P.D. Dodge (Ed.), Proceedings of the International Symposium on Large Rivers (LARS). Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, Special Publications 106, 409–421.77.
dc.relation.referencesVelasco Santamaría, Y. (2006). Evaluación de diferentes crio-protectores para la crioconservación de espermatozoides de yamú Brycon amazonicus. Rev Col Cienc Pecu, 19(2), 152-159.
dc.relation.referencesViveiros, A. (2001). Influencia de las tasas de enfriamiento y las temperaturas de inmersión en un procedimiento de congelación lenta interrumpida para el semen del bagre africano, Clarias gariepinus. Criobiología, 43:276-287.
dc.relation.referencesViveiros, A., Di Chiacchio, I., Almeida, I., Taffarel, T., and Leal, M. (2017). Storage and transportation of Prochilodus lineatus (Characiformes) sperm prior to cryopreservation. Gen Comp Endocrinol, 245:84-88. DOI: 10.1016/j.ygcen.2016.08.005.
dc.relation.referencesViveiros, A., y Godinho, P. (2009). Sperm quality and cryopreservation of Brazilian freshwater fish species: A review. Fish Physiology and Biochemistry.
dc.relation.referencesWatson, P., y Fuller, B. (2001). Principles of Cryopreservation Gametes and Embryos. En: Watson PF, Holt WV (Editores). Cryobanking the Genetic.
dc.relation.referencesWhaley, D., Damyar, K., Witek, R., Mendoza, A., Alexander, M., and Lakey, J. (2021). Cryopreservation: An Overview of Principles and Cell-Specific Considerations. Cell Transplant, 30:963689721999617. DOI: 10.1177/0963689721999617.
dc.relation.referencesXin, M., Siddique, M., Dzyuba, B., Cuevas-Uribe, R., Shaliutina-Kolešová, A., and Linhart, O. (2017). Progress and challenges of fish sperm vitrification: A mini review. Theriogenology, 98:16-22. DOI: 10.1016/j.theriogenology.2017.04.043.
dc.relation.referencesYang, S., Guan, J., and Hua, Y. (2023). Optimization of sperm cryopreservation protocol for Basa catfish (Pangasius bocourti). Cryobiology, 111:89-95. DOI: 10.1016/j.cryobiol.2023.04.001.
dc.relation.referencesYusuf, B. O., Oladepo, S. A., & Ganiyu, S. A. (2024). Efficient and Sustainable Biodiesel Production via Transesterification: Catalysts and Operating Conditions. Catalysts, 14(9), 581. DOI:10.3390/catal14090581
dc.relation.referencesZárate, M., Martínez, J., Caraballo, P. (1988). Captura y esfuerzo pesquero en la cuenca del río Magdalena y su sistema de planos inundables durante la subienda 1987 y estado actual de sus pesquerías. Informe Técnico. San Cristóbal: INDERENA; 1988. 40p.
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dc.subject.keywordsSperm kinematiceng
dc.subject.keywordsFertilityeng
dc.subject.keywordsHatchingeng
dc.subject.keywordsOsmolarityeng
dc.subject.keywordsPimelodidaeeng
dc.subject.proposalCinemática espermática
dc.subject.proposalEclosión
dc.subject.proposalFertilidad
dc.subject.proposalOsmolaridad
dc.subject.proposalPimelodidae
dc.titleCrioconservación de semen de bagre rayado Pseudoplatystoma magdaleniatum con dos crioprotectores internos (metanol y dimetilsulfóxido) y dos externos (leche en polvo descremada y yema de huevo)spa
dc.typeTrabajo de grado - Maestría
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dc.type.coarversionhttp://purl.org/coar/version/c_ab4af688f83e57aa
dc.type.contentText
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