Publicación:
Efecto del volumen de empaque, el tiempo y temperatura de descongelación en la calidad del semen criopreservado de Bocachico Prochilodus magdalenae

Vista sencilla de ítem
dc.contributor.advisorAtencio García, Victor julio
dc.contributor.advisorEspinosa Araujo, José Alonso
dc.contributor.authorCano Cuello, Reinaldo Rafael
dc.contributor.researcherAtencio García, Víctor Julio
dc.contributor.researcherEspinosa Araujo, José Alonsospa
dc.date.accessioned2020-11-12T19:09:39Zspa
dc.date.available2020-11-12T19:09:39Zspa
dc.date.issued2000-02-02spa
dc.description.abstractBocachico Prochilodus magdalenae es la principal especie de la pesca continental colombiana; sin embargo, en los últimos 40 años sus capturas han sufrido un fuerte descenso. Entre las causas de este declive se señalan la degradación ambiental, pérdida de planos inundables y la fuerte presión pesquera. Esta situación ha conducido a declararla en categoría vulnerable según los criterios de la Unión Internacional para Conservación de la Naturaleza. La crioconservación de semen es una herramienta para la conservación ex situ de especies amenazadas o en peligro de extinción; así como favorecer la disponibilidad de gametos por fuera de la época reproductiva. A pesar que existen protocolos de criopreservación de bocachico, aún son necesarios ajustes para lograr su estandarización, por tanto el objetivo del estudio fue evaluar el efecto del volumen de empaque, temperatura, y tiempo de descongelación sobre la calidad del semen criopreservado de bocachico; para lo cual se obtuvo semen mediante inducción hormonal con EPC® a razón de 5 mg/kg de peso vivo, se evaluó y se diluyó (1:4) en una solución compuesta por DMSO 10%, glucosa 6% y yema de huevo 12%; se empacaron en dos volúmenes de pajillas (0.5 y 2.5 ml). Se congeló en vapores de nitrógeno en un termo dry shipper y después de 6 meses se descongelaron a dos temperaturas (35 y 60°C) y cuatro tiempos de descongelación (30, 60, 90 y 120 s). En total se evaluaron 16 tratamientos en un diseño completamente aleatorizado con arreglo factorial 2x2x4 (dos volúmenes de empaque, dos temperaturas de descongelación y cuatro tiempos de descongelación). La calidad del semen fresco y post-descongelación se realizó con el software Sperm Class Analyzer (Microptic, SCA®, España), analizando la movilidad total, tipos de movilidad, progresividad y velocidades espermáticas.spa
dc.description.degreelevelMaestríaspa
dc.description.degreenameMagíster en Ciencias Ambientalesspa
dc.description.modalityTrabajo de Investigación y/o Extensión
dc.description.modalityTrabajo de Investigación/Extensiónspa
dc.description.tableofcontents1. INTRODUCCIÓN .......................................................................................11spa
dc.description.tableofcontents2. OBJETIVOS………………………………………………………………………….. 13spa
dc.description.tableofcontents2.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS……………………………………………………… 13spa
dc.description.tableofcontents3. MARCO TEÓRICO………………………………………………………………….. 14spa
dc.description.tableofcontents3.1 BIOECOLOGIA DE LA ESPECIE………………… 14spa
dc.description.tableofcontents3.2 CRIOPRESERVACIÓN DE SEMEN DE PECES.................................. 16spa
dc.description.tableofcontents3.2.1 Generalidades de la criopreservación...............................................................16spa
dc.description.tableofcontents3.2.2 Aspectos a considerar en protocolos de criopreservación............... 17spa
dc.description.tableofcontents3.3 CRIOPRESERVACIÓN DE SEMEN DE PECES EN COLOMBIA .............22spa
dc.description.tableofcontents4 MATERIALES Y MÉTODOS................................................ 25spa
dc.description.tableofcontents4.1 ÁREA DE ESTUDIO............................................................. 25spa
dc.description.tableofcontents4.1 MATERIAL BIOLÓGICO........................................................... 25spa
dc.description.tableofcontents4.2 1 Obtención de productos sexuales..............................................25spa
dc.description.tableofcontents4.3 TRATAMIENTOS Y DISEÑO EXPERIMENTAL................................... 26spa
dc.description.tableofcontents4.4 EVALUACIÓN SEMINAL............................................. 28spa
dc.description.tableofcontents4.4.1 Movilidad total, tipos de movilidad, progresividad total y velocidades espermáticas............ 28spa
dc.description.tableofcontents4.4.2 Duración de la movilidad......................................................... 28spa
dc.description.tableofcontents4.4.3 Concentración espermática ...........................................................................29spa
dc.description.tableofcontents4.5 TASA DE FERTILIZACIÓN Y ECLOSIÓN................................... 29spa
dc.description.tableofcontents4.5.1 Calidad de agua en la incubación.........................................30spa
dc.description.tableofcontents4.6 ANÁLISIS ESTADÍSTICO................................................................30spa
dc.description.tableofcontents5. RESULTADOS..................................................................31spa
dc.description.tableofcontents5.1 CARACTERÍSTICAS SEMEN FRESCO........................................................................31spa
dc.description.tableofcontents5.2 CARACTERÍSTICAS SEMEN DESCONGELADO.....................................32spa
dc.description.tableofcontents5.2.1 Movilidad total y tipos de movilidad..............................32spa
dc.description.tableofcontents5.2.2 Progresividad total y velocidad espermática................................33spa
dc.description.tableofcontents5.3 DESEMPEÑO REPRODUCTIVO DE SEMEN CRIOPRESERVADO..................34spa
dc.description.tableofcontents5.3.1 Fertilización....................................................................................................34spa
dc.description.tableofcontents5.3.2 Eclosión.........................................................................................35spa
dc.description.tableofcontents5.4 EFECTO DE FACTORES EVALUADOS Y SU INTERACCIÓN.....................36spa
dc.description.tableofcontents6. DISCUSIÓN..........................................................................................37spa
dc.description.tableofcontents6.1 SEMEN FRESCO.............................................................................................37spa
dc.description.tableofcontents6.2 MOVILIDAD TOTAL Y TIPOS DE MOVILIDAD...............................................38spa
dc.description.tableofcontents6.3 PROGRESIVIDAD TOTAL Y VELOCIDAD ESPERMATICA..................41spa
dc.description.tableofcontents6.4 DESEMPEÑO REPRODUCTIVO SEMEN CRIOPRESERVADO................44spa
dc.description.tableofcontents6.4.1 Fertilización...............................................................................44spa
dc.description.tableofcontents6.4.2 Eclosión..............................................................................47spa
dc.description.tableofcontents6.5 INTERACCIÓN DE FACTORES EVALUADOS ......................47spa
dc.description.tableofcontents7. CONCLUSIONES..................................................................50spa
dc.description.tableofcontents8.BIBLIOGRAFÍA................................................................................51spa
dc.description.tableofcontents9. ANEXOS..........................................................................................60spa
dc.format.mimetypeapplication/pdfspa
dc.identifier.urihttps://repositorio.unicordoba.edu.co/handle/ucordoba/3575spa
dc.language.isospaspa
dc.publisherUniversidad de Córdoba
dc.publisher.facultyFacultad de Ciencias Básicasspa
dc.publisher.placeMontería, Córdoba, Colombia
dc.publisher.programMaestría en Ciencias Ambientalesspa
dc.relation.referencesAmidi F., Pazhohan A., Shabani Nashtaei M., Khodarahmian M., Nekoonam S. 2016. The role of antioxidants in sperm freezing: a review. Cell Tissue Bank; 17:745–756.spa
dc.relation.referencesAndrade R., Bazzoli N., Rizzo E., Sato Y. 2001. Continuous gametogénesis in the neotropical freshwater teleost, Bryconops affinis (Pisces: Characidae).Tiss Cell; 33: 524-532.spa
dc.relation.referencesAsturiano J., Sørensen S., Pérez L., Lauesen P., Tomkiewicz J. 2016. First production of larvae using cryopreserved sperm: effects of preservation temperature and cryopreservation on European eel sperm fertilization capacity. Reprod. Domest. Anim; 51: 485–491. https://doi.org/10.1111/rda.12706.spa
dc.relation.referencesAtencio-Garcia V, Dorado-Longas M, Montes-Petro C, Prieto-Guevara M, Espinosa-Araujo J. Cryopreservation of dorada (Brycon moorei) sperm with dimethyl sulfoxide. Rev. colomb. Biotecnol. 2017; 19(2): 87-94. http://dx.doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v19n2.59987.spa
dc.relation.referencesAtencio-García V., Espinosa-Araujo J., Martínez J., Pardo-Carrasco S. 2015. Insemination of bocachico fish (Prochilodus magdalenae) with fresh or cryopreserved semen: effect of spermatozoa/oocyte ratio. Rev Colombiana de Ciencia Pecuaria; 28:347-355.spa
dc.relation.referencesAtencio-García V. 2014. Producción de alevinos de especies nativas: con énfasis en Brycónidos. Memorias. XIV Congreso colombiano y IV latinoamericano de estudiantes de Ciencias Biológicas. ANEC, Santa Marta.spa
dc.relation.referencesAtencio-García V., Pérez Almanza E., Espinosa J., Pardo S. 2013. Evaluación de dimetilacetamida como crioprotector para la crioconservación de semen de bocachico Prochilodus magdalenae. Rev MVZ Córdoba; 45: 151-158.spa
dc.relation.referencesAtencio-García V., Pertúz V., Kerguelén E. 2010. Rescate de larvas de peces reofílicos en la desembocadura del río Sinú como estrategia para diversificar las especies del programa de repoblamiento. Universidad de Córdoba/Empresa Urrá SA-ESP, Montería, Colombia.spa
dc.relation.referencesAtencio-García V., Kerguelén E., Wadnipar L., Narváez A. 2003. Manejo de la primera alimentación del bocachico Prochilodus magdalenae. Rev MVZ Córdoba; 8(1):254-260.spa
dc.relation.referencesAtencio-García V. 2003. Producción de alevinos de peces migratorios continentales en Colombia. CIVA 2003. http://www.civa2003.org. Babin P., Cerdà J., Lubzens E. 2007. (eds) The Fish Oocyte: From Basic Studies to Biotechnological Applications. Springer, Dordrecht.spa
dc.relation.referencesBalamurugan R., Munuswamy N. 2017. Crioconservación de esperma en salmonete gris Mugil cephalus (Linnaeus, 1758). Anim Reprod Sci; 185: 205-213. doi: 10.1016 / j.anireprosci.2017.08.022.spa
dc.relation.referencesBart A., Wolfe D., Dunham R. 1998. Cryopreservation of blue catfish spermatozoa and subsequent fertilization of Channel catfish eggs. Trans Am Fish Soc; 127: 819- 824.spa
dc.relation.referencesBobe J., Labbé C. 2010. Egg and sperm quality in f ish. Gen Comp Endocrinol; 165 (3) :535-48.spa
dc.relation.referencesBrown G., Mims S. 1999. Cryopreservation of padllefish Polyodon spathula milt. J. World Aquacult. Soc; 30: 245-249.spa
dc.relation.referencesBrown J., Senger D., Becker W. 1991. Effect of group thawing on post-thaw viability of bovine spermatozoa packaged in 5 ml French straws. J. Anim. Sci; 69 (6): 2303–2309.spa
dc.relation.referencesButts I., Galvano P., Johnson K., Wilson C., Pitcher T. 2013. Ovarian fluid influences sperm performance in lake trout, Salvelinus namaycush. Rev Reproductive biology; 13: 172–175.spa
dc.relation.referencesButts I., Feindel N., Neil S., Kovács É., Urbányi B., Trippel E. 2011. Cryopreservation of Atlantic cod (Gadus morhua) sperm in large-volume straws: applications for commercial production and gene banking. Aquac. Res; 42: 1714–1722. https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2010.02769.x.spa
dc.relation.referencesCabrita E., Martínez-Páramo S., Gavaia P., Riesco M., Valcarce D., Sarasquete C., Herráez M., Robles V. 2014. Factors enhancing fish sperm quality and emerging tools for sperm analysis. Aquaculture; 432: 389–401.spa
dc.relation.referencesCabrita, E., Sarasquete, C., Martínez-Páramo, S., Robles, V., Beirão, J., Pérez-Cerezales, S., y Herráez, MP (2010). Criopreservación de esperma de pescado: aplicaciones y perspectivas. Revista de Ictiología Aplicada, 26 (5), 623-635. doi: 10.1111 / j.1439-0426.2010.01556.xspa
dc.relation.referencesCabrita E., Robles V., Álvarez R., Herraez M. 2001. Cryopreservation of Rainbow trout sperm in large volume straws: Application to large scale fertilization. Aquaculture; 201: 301–314.spa
dc.relation.referencesChanatasig-Chicaiza J. Crioconservación de semen de trucha arcoiris (Oncorhynchus mykiss) en el laboratorio de biotecnología de reproducción de la carrera de medicina veterinaria de la universidad técnica de Cotopaxi. 2015, Tesis de Pregrado. Universidad Técnica de Chicaiza; Latacunga-Ecuador.spa
dc.relation.referencesChen S., Ji X., Yu G., Tian Y., Sha Z. 2004. Cryopreservation of Sperm from turbot (Scophthalmus maximus) and application to large-scale fertilization. Aquaculture; 236: 547–556. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2003.10.027.spa
dc.relation.referencesCruz-Casallas P., Medina-Robles V., Velasco-Santamaría Y. 2006. Protocolo para la crioconservación de semen de yamú. Rev. Col Cienc Pecu; 19(2): 146-51.spa
dc.relation.referencesCruz-Casallas P., Pardo-carrasco S., Lombo-castellanos P., Lombo-Rodríguez D., Pardo-Mariño J. 2004. Cryopreservatión of Yamú Brycon Siebenthalae Milt. World Aquaculture Society; 35(4): 529-535.spa
dc.relation.referencesCruz-Casallas P., Mojica-Rodríguez J., Pinzón-Arciniega S. 2005. Ensayos preliminares sobre crioconservación de semen de bagre rayado (Pseudoplatystoma fasciatum Linnaeus 1766), Universidad de Los Llanos, Colombia Orinoquia; 9: 28-37.spa
dc.relation.referencesCuenca-Condoy Mercy., Avellaneda-Cevallos J. 2017. Diluyentes utilizados en inseminacion artificial porcina. Revista electrónica de veterinaria REDVET [en kinea];18 (9):1-11 [fecha de consulta 14 de septiembre de 2019]. ISSN: Disponible en: http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=63653009012spa
dc.relation.referencesDoNascimiento, C., Herrera-Collazos, E. E., Herrera-R., G. A., Ortega-Lara, A., Villa-Navarro, F. A., Usma Oviedo, J. S., & Maldonado-Ocampo, J. A. (2017). Checklist of the freshwater fishes of Colombia: a Darwin Core alternative to the updating problem. ZooKeys, 708, 25–138. doi:10.3897/zookeys.708.13897spa
dc.relation.referencesDenniston R., Michelet S., Bondioli K., Godke R. 2011. Principles of Embryo Cryopreservation. III. Basics of Cryopreservation. En: Tiersch TR, Green CC Editors. Cryopreservation in Aquatic Species. Baton Rouge, Louisiana, U. S. A. World Aquaculture Society; 274-290.spa
dc.relation.referencesDing F., Lall S., Li J., Lei J., Rommens M., Milley J. 2011. Cryopreservation of sperm from Atlantic halibut (Hippoglossus hippoglossus, L.) for commercial application. Cryobiology; 63: 56-60.spa
dc.relation.referencesDreanno C., Suquet M., Quemener L., Cosson J., Fierville F. 1997. Cryopreservation of turbot (Scophthalmus maximus) spermatozoa. Theriogenology; 48: 589-603.spa
dc.relation.referencesFigueroa E, Valdebenito I, Farias JG. (2016) Technologies used in the study of sperm function in cryopreserved fish spermatozoa. Aquaculture Research, 1–15. DOI:10.1111/are.12630.spa
dc.relation.referencesGarcía J, Celis L, Villalba E, Mendoza L, Brú S, Atencio V, Pardo S. (2011). Evaluación del policultivo de bocachico Prochilodus magdalenae y tilapia Oreochromis niloticus utilizando superficies fijadoras de perifiton. Revista de la Facultad de Medicina Veterinaria y de Zootecnia, 58(2), 71-83. Revisado el 14 de septiembre de 2019. Disponible en: http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S01209522011000200002&lng=en&tlng=es.spa
dc.relation.referencesGrassiotto Q, Negräu JN, Carvalho ED, Foresti F. Ultraestructure of spermatogenic cells and spermatozoa in Hoplias malabaricus (Teleostei, Characiformes, Erythrinidae) J Fish Biol 2001;59:1494-1502.spa
dc.relation.referencesHazel J., Williams E. 1990. The role of alterations in membrane lipid composition in enabling physiological adaptation of organisms to their physical environment. Progress in lipid research; 29: 167-227.spa
dc.relation.referencesHerrera-Cruz E., Aristizábal-Regino J., Estrada A., Yepes-Blandón J., Espinosa J., Atencio-García V. 2018. Criopreservación de semen de bagre rayado (Pseudoplatystoma magdaleniatum) con tres diferentes crioprotectores. Meeting Abstract Lacqua.spa
dc.relation.referencesIwamatsu T. 2000. Fertilization in fishes. In: Tarin J, Cano A (eds). Fertilization in Protozoa and Metazoa Animals. Springer, Berlin, Germany; 90-145.spa
dc.relation.referencesJudycka S., Zarski D., Dietrich M., Palinska-Zarska K., Karol H., Ciereszko A. 2019. Protocolo de crioconservación estandarizado del semen de la perca europea (Perca fluviatilis) permite obtener altas tasas de fertilización con el uso de semen congelado / descongelado. Acuicultura; 498: 208-216.spa
dc.relation.referencesKrauskova L., Prochazkova J., Klaskova M., Filipová L., Chaloupková R., Malý S. 2016. Suppression of protein inactivation during freezing by minimizing pH changes using ionic cryoprotectants. Int J Pharm; 509: 41–49.spa
dc.relation.referencesLabbé C., Maisse G. 1996. Influence of rainbow trout termal acclimation on sperm cryopreservation: relation to change in the lipid composition of the plasma membrane. Aquaculture; 145: 281-294.spa
dc.relation.referencesLahnsteiner F., Berger B., Weismann T., Patzner R. 1996. Physiological and biochemical determination of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss, semen quality for Cryopreservatión. J. Appl. Aquac; 6: 47–73.spa
dc.relation.referencesLahnsteiner F., Weismann T., Patzner R. 1997. Aging processes of rainbow trout semen during storage. Prog. Fish Cult; 59: 272-279.spa
dc.relation.referencesLiu Q., Li J., Zhang S., Ding F., Xu X., Xiao Z., Xu S. 2006. An efficient ethodology for cryopreservation of spermatozoa of red Seabream, Pagrus major, with 2-mL ryovials. J. World Aquac. Soc; 37: 289–297. https://doi.org/10.1111/j.1749-7345.2006.00039.xspa
dc.relation.referencesMartínez G., Atencio-García V., Pardo-Carrasco S. 2011. Efectos de la concentración de glucosa sobre la activación de la movilidad espermática en bocachico Prochilodus magdalenae. Rev. MVZ Córdoba; 16 (2): 2554 – 2563.spa
dc.relation.referencesMartínez G. 2010. Efecto del crioprotector y osmolaridad del diluyente sobre la calidad espermática y el material genético en semen crioconservado de bocachico Prochilodus magdalenae [Tesis de maestría]. Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia sede Medellín, Colombia.spa
dc.relation.referencesMartínez J., Pardo S. 2010. Crioconservación de semen en peces: efectos sobre la movilidad espermática y la fertilidad. Acta Biológica Colombiana 15 (2), 3-23.spa
dc.relation.referencesMartínez J., Pardo S. 2013. Efecto de la congelación y descongelación sobre movilidad espermática en bocachico (Prochilodus magdalenae). Rev.MVZ Córdoba 18 (1), 3295-3303.spa
dc.relation.referencesMartínez J., Atencio-García V., Pardo-Carrasco S. 2012. DNA fragmentation and membrane damage of bocachico Prochilodus magdalenae (Ostariophysi, Prochilodontidae) sperm following cryopreservation with dimethylsulfoxide and glucose. Neotrop Ichthyol; 10(3): 577-586.spa
dc.relation.referencesMartínez J., Tarazona-Morales A., Pardo-Carrasco S. 2012. Sperm cryopreservation of freshwater fish bocachico Prochilodus magdalenae in DMSO and glucose and its effects on fertilizationand hatching efficiency. Anim Reprod; 9 (1): 19-26.spa
dc.relation.referencesMartínez JG., Pardo CS. Crioconservación de semen de peces: efecto sobre la movilidad espermática y la fertilidad. Acta Biológica Colombiana [en línea]. 2010, 15 (2), 3-23[fecha consulta 14 de septiembre de 2019]. ISSN: 0120-548X. Disponible en: http://www.redalyc.org/articulo.oa? id=319027885001.spa
dc.relation.referencesMedina-Robles V., Velasco-Santamaría Y., Cruz-Casallas P. 2005. Aspectos generales de la crioconservación espermática en peces teleósteos. Rev. Col Cienc Pecu; 18(1): 34-38.spa
dc.relation.referencesMedina-Robles V., Guarnizo-Pineda M., Ramírez-Merlano J., Otero-Paternina A., Mira T., Pacheco-Murillo R., Velasco-Santamaría Y., Cruz-Casallas P. 2007. Caracterización y ensayos preliminares de crioconservación seminal de bagre rayado (Pseudoplatystoma fasciatum - Linnaeus, 1766). Memorias XIII Jornada de Acuicultura, Universidad de los Llanos, Villavicencio, Colombia, 68-72.spa
dc.relation.referencesMiskolczi E., Miha S. 2007. Cryopreservation of common carp (Cyprinus carpio) sperm in 1.2 and 5 ml straws and occurrence of haploids among larvae produced with cryopreserved sperm; 54: 251–257. https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2007.02.003.spa
dc.relation.referencesMojica J., Usma S., Álvarez R., Lasso C. 2012. Libro rojo de peces dulceacuícolas de Colombia. La serie Libros Rojos de Especies Amenazadas de Colombia. Instituto de Ciencias Naturales, Universidad Nacional de Colombia, Ministerio del Medio Ambiente, Bogotá, Colombia.spa
dc.relation.referencesMontes C. 2018. Evaluación del desempeño reproductivo del Bocachico (Prochilodus magdalenae) en cautiverio mediante predictores tempranos de calidad espermática y ovocitaria. [Tesis de Maestría], Facultad de Ciencias Básicas e Ingeniería, Maestría en Biotecnología, Universidad de Córdoba, Montería, Colombia; 90p.spa
dc.relation.referencesMoore H., M Akhondi. 1996. Fertilizing capacity of rat spermatozoa is correlated with decline in straight line speed measured by continuous computer-aided sperm analysis. J Androl; 17: 50-60.spa
dc.relation.referencesMorris G., Acton E., Murray J., Fonseca F. 2012. Freezing injury: The special case of the sperm cell. Cryobiology; 64 (2): 71-80. DOI: 10.1016/j.cryobiol.2011.12.002. Muñoz R., Martínez C. 2003. Reproducción inducida del blanquillo Sorubim cuspicaudus Littmann, Burr & Nass 2000) con Ovaprim®. [Trabajo de pregrado]. Montería (Col): Universidad de Córdoba.spa
dc.relation.referencesNavarro O., Velasco-Santamaría Y., Cruz-Casallas P. 2004. Evaluación de cinco protectores para la crioconservación de semen de cachama blanca (Piaractus brachypomus). Rev. Col. Cienc. Pec; 17: 53–59.spa
dc.relation.referencesNizio A., Marques A., Venancio R., Pinheiro J., Falanghe P., Costa H. 2015. Use of cryotubes for the cryopreservation of tambaquí Fish semen (Colossoma macropomum). Cryobiology; 70: 109-114.spa
dc.relation.referencesNovoa-Rodríguez N. Conservación de embriones de Yamú (Brycon amazonicus) a -14°C como posible estrategia de producción. 2014, [ fecha de consulta 14 de septiembre de 2019]. Disponible en: https://ciencia.lasalle.edu.co/zootecnia/257.spa
dc.relation.referencesNomura K., Chong I., Iio R., Okuda D., Kazeto Y., Tanaka H., Ohta H. 2018. Sperm cryopreservation protocols for the large-scale fertilization of Japanese eel using a combination of large-volume straws and low sperm dilution ratio. Aquaculture; 496: 203 – 2010.spa
dc.relation.referencesPineda-Santis H., Gómez-Oquendo J., Montoya-Páez J., Toro-Rendón V., Acevedo-Villa O., Restrepo-Betancur G. 2015. Crioconservación de semen y calidad espermática en sabaleta Brycon henni (Pisces: Characidae) Orinoquia; 19 (2): 176-182.spa
dc.relation.referencesPinzón-Arciniegas SM, Mojica-Rodríguez JE, Cruz-Casallas PE. 2005. Ensayos preliminares sobre crioconservación de semen de bagre rayado (Pseudoplatystoma fasciatum Linnaeus, 1766). Orinoquia 9, 28-37.spa
dc.relation.referencesPolge C., Smith A., Parkes A. 1949. Revival of spermatozoa after vitrification and dehydration at low temperatures. Nature (London); 164: 666.spa
dc.relation.referencesRamírez-Merlano J., Velasco-Santamaría Y., Medina-Robles V., Cruz-Casallas P. 2005. Crioconservación de semen de Cachama blanca (Piaractus brachypomus cuvier, 1818): efectos del volumen de empaque y de la sustancia crioprotectora sobre la calidad seminal. Rev Col Cienc Pec; 18: 331.spa
dc.relation.referencesRamírez-Merlano J., Medina-Robles V., Cruz-Casallas P. 2010. Crioconservación espermática en peces, un acercamiento en Siluriformes, Universidad de Los Llanos Villavicencio, Colombia, Orinoquia; 14: 59-71.spa
dc.relation.referencesRamírez-Merlano J., Medina-Robles V., Cruz-Casallas P. 2011. Crioconservación seminal de bagre rayado Pseudoplatystoma metaense (Teleostei, Pimelodidae), bajo diferentes protocolos de congelación. Arch Med Vet; 43: 135-144.spa
dc.relation.referencesRana K., Muiruri R., McAndrew B., Gilmor A. 1990. The influence of diluentes, equilibration time and pre-freezing storages time on the viability of cryopreservation Oreochromis niloticus (L.) spermatozoa. Aquacult and Fish Manag; 21: 25-30.spa
dc.relation.referencesRichardson G., Miller T., McNiven M. 2000. Cryopreservation of Arctic charr Salvelinus alpinus semen in various extenders and three sizes of straw. Aquacult. Res; 31: 307-315.spa
dc.relation.referencesRichardson G., Wilson C., Crim L., Yao X. 1999. Cryopreservation of yellowtail flounder (Pleuronectes ferrugineus) semen in large straws. Aquaculture; 174: 89-94.spa
dc.relation.referencesSafa S., Moghaddam G., Jozani R., Daghigh J., Kia H., Janmohammadi H. 2016. Effect of vitamin E and selenium nanoparticles on post-thaw variables and oxidative status of rooster semen. Anim Reprod Sci; 174: 100–106.spa
dc.relation.referencesSambu S. 2015. A Bayesian approach to optimizing cryopreservation protocols. Peer J; 3: 10-39.spa
dc.relation.referencesSEPEC. Boletín estadístico. 2017. Autoridad Nacional de Acuicultura y Pesca (AUNAP). Universidad del Magdalena.spa
dc.relation.referencesTiersch T., Figiel C., Wayman W., Williamson H., Carmichael G., Gorman O. 1998. Cryopreservation of sperm of the endangered Razorback sucker. Trans Am Fish Soc; 127: 95-104.spa
dc.relation.referencesTiersch T. 2011. Introduction to the second edition. In: Tiersch TH, Grenn CC (eds). Cryopreservation in aquatic species. 2 ed. World Aquaculture Society, Baton Rouge; 646 – 671.spa
dc.relation.referencesTorreta M., Wevar C., Forchetti O., Moschetti E. 1996. Effect of freezing at different levels above liquid nitrogen, with or without a thawing diluent, on the post thawing quality of boar semen frozen in large straws. Av. Prod. Anim; 21: 179–184.spa
dc.relation.referencesVarela Junior A, Goularte K, Alves J, Pereira F, Silva E, Cardoso T, et al. Methods of cryopreservation of tambaqui semen, Colossoma macropomum. Animal Reproduction Science. 2015; 157:71–77.spa
dc.relation.referencesVárkonyi, L., Bokor, Z., Molnár, J., Fodor, F., Szári, Z., Ferincz, Á., Bernáth, G. (2018). La comparación de dos extensores diferentes para la mejora de la criopreservación de esperma a gran escala en la carpa común (Cyprinus carpio). Reproducción en animales domésticos. doi: 10.1111 / rda.13383spa
dc.relation.referencesVelasco-Santamaría Y., Medina-Robles V., Cruz-Casallas E. 2006. Cryopreservation of yamú (Brycon amazonicus) sperm for large scale fertilization. Aquaculture; 256: 267-271.spa
dc.relation.referencesViveiros A, Godinho HP. 2009. Sperm quality and cryopreservation of Brazilian freshwater fish species: a review. Fish Physiol Biochem 35: 137- 150. doi: 10.1007/s10695-008-9240-3.spa
dc.relation.referencesYildiz C., Bozkurt Y., Yavas I. 2013. An evaluation of soybean lecithin as an alternative to avian egg yolk in the cryopreservation of fish sperm. Cryobiology; 67: 91–94.spa
dc.relation.referencesZhang Y., Zhang S., Liu X., Xu Y., Wang C., Sawant M., Li J., Chen S. 2003. Cryopreservation of flounder (Paralichthys olivaceus) sperm with a practical methodology. Theriogenology; 60: 989–996.spa
dc.rightsCopyright Universidad de Córdoba, 2020spa
dc.rights.accessrightsinfo:eu-repo/semantics/restrictedAccessspa
dc.rights.creativecommonsAtribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0 Internacional (CC BY-NC-ND 4.0)spa
dc.rights.urihttps://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/spa
dc.subject.keywordsConservationeng
dc.subject.keywordsSpermeng
dc.subject.keywordsFertilizationeng
dc.subject.keywordsMobilityeng
dc.subject.keywordsFisheng
dc.subject.keywordsReproductioneng
dc.subject.proposalConservaciónspa
dc.subject.proposalEspermaspa
dc.subject.proposalFertilizaciónspa
dc.subject.proposalMovilidadspa
dc.subject.proposalPezspa
dc.subject.proposalReproducciónspa
dc.titleEfecto del volumen de empaque, el tiempo y temperatura de descongelación en la calidad del semen criopreservado de Bocachico Prochilodus magdalenaespa
dc.typeTrabajo de grado - Maestríaspa
dc.type.coarhttp://purl.org/coar/resource_type/c_bdccspa
dc.type.contentTextspa
dc.type.driverinfo:eu-repo/semantics/masterThesisspa
dc.type.redcolhttps://purl.org/redcol/resource_type/TMspa
dc.type.versioninfo:eu-repo/semantics/submittedVersionspa
dspace.entity.typePublication
oaire.accessrightshttp://purl.org/coar/access_right/c_abf2spa
oaire.versionhttp://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85spa
Archivos
Bloque original
Mostrando 1 - 2 de 2
Miniatura
Nombre:
Cano Cuello Reinaldo Rafael.pdf
Tamaño:
1.26 MB
Formato:
Adobe Portable Document Format
Descripción:
Descargar
No hay miniatura disponible
Nombre:
AutorizaciónPublicación..pdf
Tamaño:
301.6 KB
Formato:
Adobe Portable Document Format
Descripción:
Descargar
Bloque de licencias
Mostrando 1 - 1 de 1
No hay miniatura disponible
Nombre:
license.txt
Tamaño:
14.48 KB
Formato:
Item-specific license agreed upon to submission
Descripción:
Descargar
Colecciones
F.G.A. Tesis