Publicación: Efecto del medio doble fase en la eficiencia de la micropropagación de plátano Musa AAB Simmonds cv Hartón
dc.contributor.advisor | Suárez Padrón, Isidro Elías | |
dc.contributor.advisor | López Diaz, Claudia Marcela | |
dc.contributor.author | Álvarez Acosta, Jader de Jesús | |
dc.contributor.jury | Barrera Violeth, José Luis | |
dc.contributor.jury | Humánez Álvarez, Alicia | |
dc.date.accessioned | 2023-11-17T19:02:32Z | |
dc.date.available | 2024-11-17 | |
dc.date.available | 2023-11-17T19:02:32Z | |
dc.date.issued | 2023-11-15 | |
dc.description.abstract | Con la finalidad de evaluar el efecto del medio doble fase y su eficiencia en la micropropagación de meristemos axilares de Musa AAB Simmonds cv Hartón, obtenidos de cormos de plantas seleccionadas y establecidas en un medio ½ MS (Murashige y Skoog) suplementado con tiamina 30 mg/L, myo-inositol 100 mg/L, sacarosa 30 g/L y ajustando el pH a 5.7. La mitad de los explantes establecidos fueron transferidos en un medio doble fase con adición de varias concentraciones de bencilaminopurina (BAP) (0,0 mg/L, 0,5 mg/L y 1,0 mg/L), mientras que la otra mitad fueron transferidos en medio semisólido adicionado con las mismas concentraciones de BAP. Los explantes micropropagados resultantes del mejor resultado, fueron transferidos a medio semisólido de enraizamiento con varias concentraciones de ácido naftalenacético (ANA) (0,0 mg/L, 0, 5 mg/L y 1,0 mg/L). Tanto los tallos multiplicados sin enraizar como los enraizados in vitro en el mejor tratamiento de enraizamiento fueron transferidos a condiciones ex vitro. Los tratamientos se distribuyeron con un diseño completo al azar, los datos se analizaron mediante un ANOVA y las medias estadísticas se compararon mediante la prueba de Tukey mediante el uso del software estadístico R-Studio v. 4.1.2. Para la fase de multiplicación el medio de cultivo doble fase (MDF) contribuyó de forma positiva en el incremento de parámetros de crecimiento como la longitud del tallo, el mayor número de tallos, mayor número de hojas por tallo. | spa |
dc.description.abstract | In order to evaluate the effect of the double-phase medium and its efficiency on the micropropagation of axillary meristems of Musa AAB Simmonds cv Hartón, obtained from corms of selected plants and established in a ½ MS medium (Murashige and Skoog) supplemented with thiamine 30 mg /L, myo-inositol 100 mg/L, sucrose 30 g/L and adjusting the pH to 5.7. Half of the established explants were transferred in a double-phase medium with the addition of various concentrations of benzylaminopurine (BAP) (0.0 mg/L, 0.5 mg/L and 1.0 mg/L), while the other half were transferred in semisolid medium added with the same concentrations of BAP. The micropropagated explants resulting in the best results were transferred to semi-solid rooting medium with various concentrations of naphthaleneacetic acid (ANA) (0.0 mg/L, 0.5 mg/L and 1.0 mg/L). Both unrooted and in vitro multiplied stems in the best rooting treatment were transferred to ex vitro conditions. The treatments were distributed with a complete randomized design, the data were analyzed by ANOVA and the statistical means were compared by Tukey's test using the R-Studio v statistical software. 4.1.2. For the multiplication phase, the double-phase culture medium (MDF) contributed positively to the increase in growth parameters such as stem length, the greatest number of stems, and the greatest number of leaves per stem | eng |
dc.description.degreelevel | Maestría | |
dc.description.degreename | Magíster en Biotecnología | |
dc.description.modality | Trabajos de Investigación y/o Extensión | |
dc.description.notes | spa | |
dc.description.tableofcontents | 1. INTRODUCCIÓN...............................................................1 | spa |
dc.description.tableofcontents | 2. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA...............................................................2 | spa |
dc.description.tableofcontents | 2.1. Antecedentes del problema...........................................2 | spa |
dc.description.tableofcontents | 2.2. Fundamento del problema ...................................................... 2 | spa |
dc.description.tableofcontents | 2.2.1. Pregunta Problema......................................................3 | spa |
dc.description.tableofcontents | 3. OBJETIVOS........................................................4 | spa |
dc.description.tableofcontents | 3.1. Objetivo General................................4 | spa |
dc.description.tableofcontents | 3.2. Especificos..................4 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4. INTRODUCCIÓN GENERAL.......................................5 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4.1. Origen y evolución del plátano...................................5 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4.1.1. Taxonomía y botánica................................5 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4.2. Importancia nutricional y económica del plátano..............6 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4.3. Tipos de propagación.....................................6 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4.3.1. Propagación clonal convencional.......................6 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4.3.1.1. Colino aguja................................7 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4.3.1.2. Meristemos apicales.......................7 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4.3.2. Propagación clonal in vitro..................8 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4.3.2.1. Micropropagación..............................8 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4.3.2.2. Micropropagación en plátano.....................8 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4.3.2.2.1. Fuente de explantes.........................9 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4.3.2.2.2. Selección del material vegetal...................10 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4.3.2.2.3. Desinfección del material vegetal.......................10 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4.3.2.2.4. Establecimiento....................10 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4.3.2.2.5. Medios de cultivo in vitro para plátano................11 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4.3.2.2.6. Micropropagación en un medio doble fase..........12 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4.3.2.2.7. Enraizamiento......................................13 | spa |
dc.description.tableofcontents | 4.3.2.2.8. Aclimatación.....................13 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5. METODOLOGÍA............................14 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.1. Ubicación de la investigación....................14 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.2. Material genético..................................................14 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.3. Fases la investigación....................................................15 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.3.1. Obtención y preparación del material vegetal.....................15 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.3.2.preparación y establecimiento de los explantes.................15 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.3.3. Multiplicación in vitro..................................16 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.3.4. Enraizamiento............................17 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.3.5. Adaptación ex vitro.........................18 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.3.6. Diseño experimental y análisis estadístico.............19 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.3.7. Tratamientos......................................19 | spa |
dc.description.tableofcontents | 5.3.8. Variables....................................19 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6. RESULTADOS Y DISCUSIONES.........................21 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6.1. Resultados fase de multiplicación in vitro................21 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6.1.1. Longitud del tallo.......................................21 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6.1.2. Número de tallos.......................................23 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6.1.3. Número de hojas....................................14 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6.2. Discusión de resultados fase de multiplicación in vitro...............26 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6.2.1. Longitud del tallo.....................................26 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6.2.2. Número de tallos.............................................27 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6.2.3. Número de hojas.....................................28 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6.3. Fase de enraizamiento in vitro...........................30 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6.3.1. Numero de raíces..............................30 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6.3.2. Longitud de raíces............................31 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6.4. Discusión de resultados fase de enraizamiento in vitro..............32 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6.5. Resultados fase de adaptación ex vitro..................35 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6.5.1. Longitud del tallo....................................35 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6.5.2. Diámetro del tallo...........................36 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6.5.3. Número de hojas.................................37 | spa |
dc.description.tableofcontents | 6.5.4. Supervivencia de las plántulas en condiciones ex vitro............37 | spa |
dc.description.tableofcontents | 7. CONCLUSIONES GENERALES..............38 | spa |
dc.description.tableofcontents | 8. RECOMENDACIONES..................39 | spa |
dc.description.tableofcontents | 9. REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS......................40 | spa |
dc.identifier.instname | Universidad de Córdoba | |
dc.identifier.reponame | Repositorio Universidad de Córdoba | |
dc.identifier.repourl | https://repositorio.unicordoba.edu.co/ | |
dc.identifier.uri | https://repositorio.unicordoba.edu.co/handle/ucordoba/7936 | |
dc.language.iso | spa | |
dc.publisher | Universidad de Córdoba | |
dc.publisher.faculty | Facultad de Ciencias Básicas | |
dc.publisher.program | Maestría en Biotecnología | |
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dc.rights | Copyright Universidad de Córdoba, 2023 | |
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dc.rights.license | Atribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0 Internacional (CC BY-NC-ND 4.0) | |
dc.rights.uri | https://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/ | |
dc.subject.keywords | Axillary meristems | eng |
dc.subject.keywords | Double phase medium | eng |
dc.subject.keywords | Semisolid medium | eng |
dc.subject.keywords | Explant | eng |
dc.subject.keywords | Rooting | eng |
dc.subject.keywords | In vitro | eng |
dc.subject.proposal | Meristemos axilares | spa |
dc.subject.proposal | Medio doble fase | spa |
dc.subject.proposal | Medio semisólido | spa |
dc.subject.proposal | Explante | spa |
dc.subject.proposal | Enraizamiento | spa |
dc.subject.proposal | In vitro | spa |
dc.title | Efecto del medio doble fase en la eficiencia de la micropropagación de plátano Musa AAB Simmonds cv Hartón | spa |
dc.type | Trabajo de grado - Maestría | |
dc.type.coar | http://purl.org/coar/resource_type/c_bdcc | |
dc.type.coarversion | http://purl.org/coar/version/c_ab4af688f83e57aa | |
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