Herazo Cárdenas, Diana SofíaVallejo Isaza, AdrianaPineda Rodríguez, Yirlis Yadeth2023-08-152023-08-152023-08-11https://repositorio.unicordoba.edu.co/handle/ucordoba/7649Limnospira maxima es una cianobacteria cultivada por su contenido de proteínas, vitaminas, y ficobiliproteínas. El objetivo de este estudio fue analizar el impacto del tipo de luz y fuente de nitrógeno en el crecimiento y contenido de pigmentos de L. maxima. Siendo necesario primeramente 1. Tipificar la cepa mediante el marcador molecular ARNr 16S; 2. Evaluar la tasa de crecimiento de L. maxima en función del tipo de luz y fuente de nitrógeno; y 3. Determinar el contenido de pigmentos bajo diferentes espectros de luz y fuentes de nitrógeno. La tipificación se realizó utilizando primers que amplifican la región ARNr 16S. Para obtener ADN de calidad, se evaluaron tres kits de extracción de ADN y dos tipos de muestra; encontrándose que el Kit de ADN genómico PureLink™ con biomasa pulverizada (Pbact-P) fue el mejor método. Para evaluar la tasa de crecimiento (peso seco y densidad óptica) se emplearon cuatro tipos de luz y dos fuentes de nitrógeno, incluyendo un control. Se observó que la luces blanca y amarilla generaron los mejores resultados. Tanto el KNO3 y NaNO3 mostraron resultados similares, sin embargo, se recomienda el KNO3 al ser más rentable; la deficiencia de nitrógeno estimuló la biomasa seca, pero afectó la concentración de pigmentos. Finalmente, para determinar el contenido de pigmentos, se midieron las concentraciones de clorofila, carotenoides y ficobiliproteínas; encontrándose que la luz blanca promovió los mayores contenidos de ficocianina (el pigmento más importante de las cianobacterias).Limnospira maxima is a cyanobacterium cultivated for its protein, vitamin, and phycobiliprotein content. The aim of this study was to analyze the impact of light type and nitrogen source on the growth and pigment content of L. maxima. It was necessary to first 1. Characterize the strain using the 16S rRNA molecular marker; 2. Evaluate the growth rate of L. maxima based on light type and nitrogen source; and 3. Determine the pigment content under different light spectra and nitrogen sources. Typing was performed using primers that amplify the 16S rRNA region. To obtain high-quality DNA, three DNA extraction kits and two types of samples were evaluated, and the PureLink™ Genomic DNA Kit with pulverized biomass (Pbact-P) was found to be the best method. To evaluate the growth rate (dry weight and optical density), four types of light and two nitrogen sources, including a control, were used. It was observed that White and yellow lights produced the best results. Both KNO3 and NaNO3 showed similar results; however, KNO3 is recommended as it is more cost-effective. Nitrogen deficiency stimulated dry biomass but affected pigment concentration. Finally, to determine the pigment content in cyanobacteria, measurements of chlorophyll, carotenoid, and phycobiliprotein concentrations were conducted. The results revealed that exposure to white light had a significant effect in promoting higher levels of phycocyanin, the most relevant pigment present in cyanobacteriaINTRODUCCIÓN .....................................................................................................................31. REVISIÓN DE LITERATURA ............................................................................................51.1. GENERALIDADES DE LAS CIANOBACTERIAS. .................................................... 51.2. CARACTERÍSTICAS GENERALES DE Limnospira maxima. ................................... 61.2.1. Morfología .......................................................................................................... 61.2.2. Clasificación taxonómica ................................................................................... 71.2.3. Hábitat ............................................................................................................... 81.2.4. Reproducción y ciclo de vida ............................................................................. 91.2.5. Fases de crecimiento ....................................................................................... 101.3. COMPOSICIÓN NUTRICIONAL ............................................................................. 121.3.1. Proteínas ......................................................................................................... 131.3.2. Vitaminas ......................................................................................................... 131.3.3. Minerales ......................................................................................................... 131.3.4. Carbohidratos .................................................................................................. 141.3.5. Lípidos y ácidos grasos ................................................................................... 141.3.6. Ficobiliproteínas ............................................................................................... 141.4. APLICACIONES FARMACÉUTICAS Y NUTRACÉUTICAS DE LA ESPIRULINA .. 151.4.1. Control de peso ................................................................................................ 151.4.2. Tratamiento de la presión arterial .................................................................... 161.4.3. Importancia en el sistema inmunológico .......................................................... 161.4.4. Importancia en el tratamiento de la diabetes ............................... 171.5. PARÁMETROS DE CRECIMIENTO ....................................................................... 181.5.1. Medio de crecimiento ....................................................................................... 181.5.2. Agitación y aireación ........................................................................................ 191.5.3. Iluminación ....................................................................................................... 201.5.4. Temperatura .................................................................................................... 201.5.5. pH .................................................................................................................... 201.5.6. Salinidad .......................................................................................................... 211.6. IMPORTANCIA DEL NITRÓGENO EN Limnospira maxima. .................................. 211.7. IMPORTANCIA DEL ESPECTRO DE LUZ EN LA PRODUCCIÓN DE BIOMASA Y PIGMENTOS DE Limnospira maxima. .................................................... 222. MATERIALES Y MÉTODOS ............................................................... 242.1. OBJETIVO ESPECÍFICO 1. Tipificar la cepa L. maxima mediante el marcador molecular ARNr 16S ............................................................. 242.1.1. Cepa de cianobacterias y medio de producción ............................... 242.1.2. Toma de muestras ........................................................................................... 252.1.3. Diseño experimental ........................................................................................ 252.1.4. Extracción de ADN genómico .......................................................................... 252.1.7. Análisis estadístico .......................................................................................... 272.2. OBJETIVO ESPECÍFICO 2. Evaluar la tasa de crecimiento de L. maxima en función del tipo de luz y fuente de nitrógeno. .............................................. 282.2.1. Cepa de cianobacterias y medio de producción ......................... 282.2.2. Condiciones del experimento y diseño experimental. ..................... 282.2.3. Densidad óptica y peso seco. .............................................. 292.2.4. Análisis estadístico ............................................................ 302.3. OBJETIVO ESPECÍFICO 3. Determinar el contenido de pigmentos en L. maxima en función del tipo de luz y fuente de nitrógeno. ..................................... 302.3.1. Determinación de clorofila y carotenoides totales ..................... 302.3.2. Determinación de ficobiliproteínas ............................................ 312.3.3. Determinación de proteínas solubles ................................ 312.3.2. Análisis estadístico .................................................................. 323. RESULTADOS Y DISCUSIÓN ................................................................. 323.1. OBJETIVO ESPECÍFICO 1. Tipificar la cepa L. maxima mediante el marcador molecular ARNr 16S ...................................................................... 323.1.1. Concentración de ADN y relaciones de pureza A260/A280 y A260/A230. ........... 323.2. OBJETIVO ESPECÍFICO 2. Evaluar la tasa de crecimiento de L. maxima en función del tipo de luz y fuente de nitrógeno. ............................................. 373.2.1. Medición de la radiación fotosintéticamente activa (RFA) ................ 373.2.2. Densidad óptica (DO) y peso seco (PS). ................................... 373.3. OBJETIVO ESPECÍFICO 3. Determinar el contenido de pigmentos en L. maxima en función del tipo de luz y fuente de nitrógeno. ...................... 423.3.1. Clorofila (Chla y Chlb) y carotenoides totales. ............................... 423.3.2. Ficobiliproteínas (Ficocianina, aloficocianina, ficoeritrina) y proteínas solubles ... 453.4. Análisis de Componentes Principales .............................................. 694. CONCLUSIONES .................................................................... 735. RECOMENDACIONES ................................................................. 746. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS .................................................. 757. ANEXOS ....................................................................................... 85application/pdfspaCopyright Universidad de Córdoba, 2023Trabajo de grado - Maestríainfo:eu-repo/semantics/openAccessAtribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0 Internacional (CC BY-NC-ND 4.0)FicocianinaSeguridad alimentariaPigmentosCianobacteriaPhycocyaninFood safetyPigmentsCyanobacteria